灵芝多糖的分离与纯化

对灵芝多糖的提取工艺进行研究，采用冷、热水、冷、热碱液分别从灵芝菌丝体和子实体中提取灵芝多糖，使多糖获得初步分级。还比较了浸提温度、加水比、浸提次数、提取时间等因素对粗提的影响，选定了适宜的提取工艺，并选用层析法纯化了多糖，使多糖纯度达到９６％以上。     

灵芝菌丝体多糖含量的准确测定

灵芝菌丝体由于从培养基中夹带一定的糖类物质(主要是蔗糖,淀粉),其有效灵芝多糖含量的测定受到较大影响,该文介绍I2-DMSO溶液法除淀粉,先用CaCI2溶液糊化淀粉,再用I2-DMS0溶液在超声、65℃条件下溶解淀粉,后继用去离子水在85℃下提取灵芝多糖,最后用标准灵芝菌丝体求得校正系数来校正溶解在I2-DMSO溶液中的灵芝多糖,从而比较准确地测定灵芝多糖的含量.     

灵芝菌丝体多糖含量的准确测定

灵芝菌丝体由于从培养基中夹带一定的糖类物质 (主要是蔗糖 ,淀粉 ) ,其有效灵芝多糖含量的测定受到较大影响 ,该文介绍I2 DMSO溶液法除淀粉 ,先用CaCl2 溶液糊化淀粉 ,再用I2 DMSO溶液在超声、6 5℃条件下溶解淀粉 ,后继用去离子水在 85℃下提取灵芝多糖 ,最后用标准灵芝菌丝体求得校正系数来校正溶解在I2 DMSO溶液中的灵芝多糖 ,从而比较准确地测定灵芝多糖的含量。      

灵芝菌发酵培养基的优化及灵芝胞外多糖的分离纯化

用正交法研究了不同条件对灵芝菌生长影响,从中选出了灵芝菌液体深层发酵的优化培养基葡萄糖3.6%,蛋白胨0.4%,pH 6.0,酵母膏0.2%,KH2PO4 0.1%,MgSO4·7H2O 0.05%,Vit B1 0.005%,每升发酵液产干菌丝体15.6 g,粗多糖0.72 g.经葡聚糖凝胶层析对灵芝胞外多糖进行了分离纯化,共有5个组分,并用红外光谱、紫外光谱,气相色谱等手段进一步分析了灵芝胞外多糖的组成,结果表明灵芝胞外多糖系由甘露糖、果糖、葡萄糖通过糖β-D-糖苷键构成.     

灵芝多糖的分离纯化及结构鉴定

运用DEAE-Sephadex A25离子色谱和Sepharose CL-6B凝胶色谱分离纯化得到一种灵芝多糖组分GLPS1a。高效液相凝胶渗透色谱法(high-performance gel-permeation chromatography,HPGPC)法测得其呈单一峰,重均分子质量为1.8×105D。GLPS1a经单糖组成分析、红外、核磁共振等手段分析,结果表明单糖组成为阿拉伯糖、半乳糖、葡萄糖和木聚糖,物质的量比率为4:2:10:1。GLPS1a具有一条以β→(1,3)位键合的吡喃葡萄糖主链,同时存在β→(1,3)阿拉伯糖、β-D-(1,4)半乳糖、α-D-(1,2)木糖和α-D-(1,6)葡萄糖的分支残基。     

大粒车前子多糖分离、纯化及单糖组成分析

沸水法提取得到的大粒车前子粗多糖经过Sevag法脱蛋白后,运用生物大分子纯化系统（AKTAPurifier100）,采用凝胶柱层析法分离、纯化,得到一多糖组分（PLP,PlantagoasiaticaL．polysaccharide）。应用高效凝胶渗透色谱法（HPGPC）分析PLP纯度并测定其相对分子质量。气相色谱一质谱（GC—MS）联用分析PLP单糖组成。结果表明,PLP为均一多糖,其相对分子量约891．3kD。PLP主要由阿拉伯糖、木糖、甘露糖和半乳糖构成,其摩尔比为5．6：9．4：1．3：1。     

葱白多糖的分离纯化及分子量分布研究

研究了葱白多糖的分离纯化以及分子量分布。试验结果表明:经沸水提取、脱除果胶、透析后的葱白多糖含量为75.0%。采用Sephadex G-150柱层析纯化,得到葱白多糖P2。经过紫外扫描和高效液相色谱法分析表明:P2为均一多糖,高效液相凝胶色谱法测定P2分子量(Mw)为5.195kDa。     

白灵菇菌丝体多糖的分离纯化及理化性质研究

研究白灵菇菌丝体粗多糖的分离纯化技术,并对得到的多糖进行纯度鉴定及理化性质研究。结果表明,白灵菇菌丝体多糖（PNMP）经DEAE-Cellulose52和Sephadex G-200柱层析后得到单一组分PNMPⅢ-a,经分析鉴定,PNMPⅢ-a为不含双糖、糖醛酸和核酸的非淀粉类的均一多糖;其相对分子质量为15213Da。PNMPⅢ-a完全酸水解后,经高效液相色谱分析确定其糖基的组成为葡萄糖（Glc）、鼠李糖（Rha）、木糖（Xyl）和核糖（Nbo）。红外光谱分析表明,PNMPⅢ-a是一种含有氨基、硫酸酯键、β-糖苷键和α-D葡萄糖的蛋白多糖。      

灰树花菌丝体多糖G.F.-1的分离纯化及其理化特性的研究

通过对灰树花菌丝体进行多糖的提取、分离纯化,得到多糖G.F.-1。研究表明,G.F.-1是一种均一性好、分子量为1.23×106的大分子纯多糖,其单糖组成的摩尔比为Xyl∶Man∶Glc=0.9∶1.4∶4.7;一级结构是主链中β(1→3)、β(1→6)糖苷键为主,分枝点主要发生在C6位的β-D-葡聚糖所构成。     

龙牙百合多糖的纯化及其分子量的测定

本研究用DEAE-sepharose Fast Flow柱从百合水提物中分离纯化得到两种多糖LLP1、LLP2,经高效凝胶渗透色谱法(HPGPC)鉴定LLP1为单一组分、LLP2为糖蛋白,将这两种多糖进行气相色谱分析。结果如下:LLP1由甘露糖、葡萄糖和阿拉伯糖组成,分子量为11756D,LLP2由半乳糖、鼠李糖和阿拉伯糖组成,分子量1038773D。     

灵芝菌丝体发酵酒的研制

研制了灵芝菌丝体发酵酒的工艺及关键参数,制成风味独特的、具有营养保健功能的灵芝菌丝体发酵酒。     

固体发酵紫芝菌丝体水溶性多糖的提取

采用热水浸提法提取紫芝水溶性多糖。选择浸提时间、温度、浸提固液比作为单因素进行梯度实验,确定其条件范围,再通过进一步的正交实验得到紫芝水溶性多糖浸提工艺的优化因素组合。     

不同产地金针菇多糖的分子量和单糖组成比较研究

分别采用高效液相色谱法和气相色谱法测定四川、浙江、福建这3个产地的金针菇多糖的分子量和单糖组成。结果是:这3种金针菇均有2种不同分子量的多糖,分子量较高在1064661～1293488u,分子量较低在19136～19829u;四川和浙江的金针菇分子量较高的多糖均含有5种单糖,分别是鼠李糖、阿拉伯糖、甘露糖、葡萄糖和半乳糖,而福建的只含有4种多糖,缺少鼠李糖。     

燕麦多糖的提取工艺及分子量分布研究

通过单因素实验和正交实验研究了燕麦多糖的提取条件,并采用Sephadex G-75色谱柱对燕麦多糖进行了纯化,采用高效液相色谱法测定了燕麦多糖的分子量分布。结果表明,燕麦多糖的最佳提取条件为:提取温度60℃,料液比1∶10,提取时间1.5h,提取3次,该条件下燕麦多糖得率为10.92±0.03g/100g。高效液相色谱测定结果表明,燕麦多糖是由分子量为400～600kDa和150kDa两部分组成的。     

挤压膨化预处理技术对灵芝多糖提取的影响

以灵芝子实体为原料,在热水浸提前进行双螺杆挤压膨化预处理,以提高灵芝多糖的提取得率。分别采用单因素和正交实验对物料提取前的挤压膨化预处理条件进行优化,然后采用高效凝胶排阻色谱对比了挤压膨化预处理对水提灵芝多糖分子量分布的影响。在物料粒度60目时,通过优化得到了双螺杆挤压膨化预处理的最优工艺:套筒温度160℃,固液比1:3,螺杆转速150 r/min,采用上述条件进行预处理后,灵芝多糖的提取得率为7.92%,较未挤压膨化灵芝的多糖提取得率提高了92.7%,表明采用双螺杆挤压膨化技术对灵芝子实体进行预处理,可显著提高灵芝多糖的提取得率,同时双螺杆挤压膨化预处理会增加灵芝多糖提取物中低分子量多糖的比例。      

枸杞多糖的纯化及相对分子质量研究

旨在研究枸杞多糖(LBP)的纯化,并测定其相对分子质量。采用色谱法和溶剂法研究了LBP的脱色条件;利用HPLC法分别考查了醇沉、DEAE纤维素色谱柱和SephedexG-75葡聚糖凝胶色谱柱对LBP的纯化效果,并测定了多糖的相对分子质量。结果表明:最佳脱色条件为多糖溶液(0.2%,g/v)∶氯仿∶正丁醇=25∶5∶1(v/v/v)。5次醇沉可有效减少LBP中的小分子杂质;DEAE纤维素色谱柱可将枸杞多糖分为6个组分,其中以0.15mol/L和0.20mol/L的NaCl溶液为洗脱液获得的组分(LBP-4、LBP-5)含量较高;采用Sephedex G-75色谱柱对LBP-4和LBP-5进行纯化,分别得到LBP-4a和LBP-5a,经琼脂糖凝胶电泳及HPLC检验证明其为纯品,M珚n分别为866130D和1412100D。     

普洱茶发酵过程中茶多糖分子量变化研究

从不同微生物发酵的普洱茶中提取茶多糖,并对其分离纯化?分子量分析,明确茶多糖在发酵过程中的变化规律。采用热水浸提乙醇沉淀法提取茶多糖,双氧水脱色,再用凝胶色谱(GPC)法测定其分子量。结果表明,由木霉和酵母发酵的普洱茶多糖提取物中糖分与蛋白质含量均随着发酵时间的延长而增加。由木霉发酵的普洱茶中多糖的分子量随着发酵时间的延长先增大然后减小;由酵母发酵的普洱茶中多糖的分子量未呈现出规律性变化。结果表明,茶原料、发酵的微生物种类以及发酵时间等对发酵普洱茶中多糖分子量都有影响。     

双孢菇菇柄多糖柱层析纯化及单糖组成

以双孢菇菇柄为试材,首先对经超声提取得到的菇柄多糖进行柱层析分离纯化,然后对柱层析得到的多糖组分别采用紫外光谱和柱层析进行纯度分析,并进行红外光谱分析和单糖组成分析。结果表明,脱蛋白双孢菇菇柄多糖经DEAE Sephadex A-25柱层析纯化共得到4个组分,收集其中两个较多的组分(蒸馏水和0.1 mol/L NaCl洗脱组分),经紫外光谱扫描无核酸和蛋白质,经Sephadex G-200柱层析鉴定均为单一峰。所得两种多糖组分经FT-IR红外光谱分析,均含有多糖特征吸收峰,且均为吡喃糖环β-异构体的多糖。菇柄蒸馏水洗脱多糖组分由葡萄糖、半乳糖、甘露糖、木糖、阿拉伯糖组成,0.1 mol/L NaCl洗脱组分是由葡萄糖、半乳糖、甘露糖、木糖、阿拉伯糖、鼠李糖、氨基葡萄糖、氨基半乳糖组成。     

杂质残留量对不同栽培方式下灵芝多糖肽定值的影响

目的 依据国家标准样品定值要求,为提高标准样品纯度,降低杂质残留量,选择最佳栽培方式的灵芝子实体用于灵芝多糖肽(Ganoderma lucidum polysaccharide peptide, GL-PPSQ₂)标准样品的研制。方法 基于高效液相色谱法(high performance liquid chromatography, HPLC),采用面积归一法对GL-PPSQ₂主成分进行定量分析,卡尔费休库伦法(K-F)测定水分,热重分析法(thermogravimetricanalysis,TG)测定灰分,微波消解-电感耦合等离子体质谱法(inductively coupled plasma-mass spectrometry, ICP-MS)测定14种微量元素,顶空-气相色谱法(headspace-gas chromatography, HS-GC)测量溶剂残留;质量平衡法对菌草层架(A)、菌草覆土(B)、苡仁壳层架(C)、短段木覆土(D) 4组不同栽培方式所得GL-PPSQ2进行定值。结果 GL-PPSQ₂定值依次...