海洋寡糖益生菌微胶囊的制备和体外评估及其对动物肠道菌群的调节作用

为解决益生菌不耐低pH值、不耐氧的缺点,采用微胶囊包埋技术,以海藻酸钠为壁材用乳化法制备长双歧杆菌藻酸盐微胶囊。将基础藻酸盐微胶囊外包壳寡糖（chitosan oligosaccharides,COS）或在藻酸盐壁材中添加藻酸盐寡糖（alginate oligosaccharides,AOS）分别制备两种海洋寡糖微胶囊：COS-微胶囊和AOS-COS-微胶囊。体外实验表明：两种海洋寡糖微胶囊均可以显著提高长双歧杆菌在模拟消化液处理后或在4 ℃贮藏期内的存活率。AOS-COS-微胶囊在模拟胃液处理后仍能保持106 CFU/g以上的活菌数。在连续的模拟消化液处理后,AOS-COS-微胶囊中的活菌量达到基础微胶囊中的约1 000 倍。两种海洋寡糖微胶囊在4 ℃贮藏28 d后仍均能保持108 CFU/g以上的活菌数。体内实验表明：相比较未包埋的长双歧杆菌或基础微胶囊,海洋寡糖微胶囊可以显著提高动物肠道菌群中益生菌的含量,同时降低条件致病菌的含量,具有最佳的调节肠道菌群效果。因此,海洋寡糖益生菌微胶囊产品将是一种有巨大应用前景的新型功能性益生菌食品。     

酶法降解坛紫菜多糖及其产物分析

以单因素试验为基础,通过正交试验确定了坛紫菜多糖的最佳酶解工艺条件为：酶解温度40 ℃、pH?6.0、酶解时间3 h。在此条件下,坛紫菜多糖酶解后的还原糖质量浓度为（1.42±0.12）mg/mL。利用液相色谱和质谱技术对酶解产物进行了组分分析和抗氧化活性检测。结果表明：酶解产物S1和S2均以半乳糖为主,半乳糖在两样品中分别占93.0%、90.5%,S1和S2的单糖组成相差不大。S1和S2都具有抗氧化活性,尤其对·OH的清除作用明显,且抗氧化活性大小S1＞S2。聚合度在10～16内的偶数糖比聚合度为4～6的坛紫菜寡糖清除·OH和O2 － ·的能力好,说明酶解产物的抗氧化活性与其聚合度有关,只有处于特定聚合度范围内才具有明显的抗氧化活性。