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1.
本实验以哈密瓜为原料,优化了清洗工艺,研究了高压二氧化碳(high pressure carbon dioxide,HPCD)处理对鲜切哈密瓜贮藏期间(4℃避光贮藏8 d)微生物(菌落总数、霉菌和酵母菌总数)、感官指标(质量损失率、质构、感官评价)、品质指标(可溶性固形物含量、pH值、VC含量)、酶(多酚氧化酶(polyphenoloxidase,PPO)、过氧化物酶)活力的影响。本研究首先确定了强酸电解水清洗25 min为最佳清洗工艺,清洗后鲜切哈密瓜的菌落总数下降了0.81(lg(CFU/g))。2.5、3.5、4.5 MPa处理8 min后的鲜切哈密瓜在贮藏期间微生物数量显著增加,PPO活力上升,且在贮藏8 d时,质量、硬度和VC含量分别下降了16.45%~42.70%、30.38%~48.97%和96.25%~96.73%。本研究为HPCD技术应用于鲜切哈密瓜加工提供了理论依据。 相似文献
2.
采用9%聚乙烯醇+0.5%海藻酸钠包埋耐盐菌群的固定化生物硅藻土小球投加到循环式活性污泥(CAST)反应器中,对比传统CAST工艺和投加固定化小球的CAST工艺对含盐污水COD和氨氮的去除效果,考察固定化生物硅藻土小球强化CAST工艺处理含盐污水性能。试验结果表明:在相同运行条件下,投加固定化生物硅藻土小球的CAST工艺出水COD、氨氮去除率基本维持在88%和90%以上,与传统CAST工艺相比分别提高了15%和10%。同时,向CAST工艺添加固定化生物硅藻土有助于维持反应器中微生物浓度稳定,提高出水水质及其稳定性。 相似文献
3.
该研究采用Illumina MiSeq高通量测序技术对襄阳市石花酒大曲中微生物多样性进行分析。结果表明,4个样品中优势细菌门(>0.1%)为变形杆菌门(Proteobacteria)、厚壁菌门(Firmicutes)和放线菌门(Actinobacteria),且均为核心菌门;优势细菌属(>1%)为假单胞菌属(Pseudomonas)、芽孢杆菌属(Bacillus)、乳杆菌属(Lactobacillus)、链霉菌属(Streptomyces)、魏斯氏菌属(Weissella)、明串珠菌属(Leuconostoc)和Kroppenstedtia。优势真菌门(>0.1%)为子囊菌门(Ascomycota)、担子菌门(Basidiomycota)和Mucoromycota,其中子囊菌门为核心菌门;优势真菌属(>1%)为复膜孢酵母属(Saccharomycopsis)、红曲菌属(Monascus)、热子囊菌属(Thermoascus)、青霉菌属(Penicillium)、曲霉属(Aspergillus)和Leiothecium。样品中假单胞菌属和曲霉属呈现显著正相关(P<0.05)。综上,4个石花酒大曲样品中共有大量的核心菌群,且样品中细菌与真菌有一定的相关性。 相似文献
4.
5.
宜宾产区浓香型白酒酿造生境中细菌的群落结构 总被引:1,自引:0,他引:1
该文利用高通量测序技术全面解析宜宾产区浓香型白酒酿造生境中的微生物菌群结构,并对窖泥、大曲、酒醅和黄水中的细菌种类和丰度进行对比分析。结果表明,从宜宾产区白酒酿造生境的26个样品中共注释到来自于201个属的1493个OTUs,主要分布于拟杆菌门(Bacteroidete)、变形菌门(Proteobacteria)和厚壁菌门(Firmicutes),其中5个属来自于古菌域的广古菌门(Euryarchaeota)。窖泥样品中微生物菌种的多样性最高,主要以古菌、瘤胃球菌和乳酸菌为主;大曲的多样性次之,主要包括未鉴定到属水平的细菌,芽胞杆菌、乳酸菌和高温放线菌等;酒醅和黄水中的微生物多样性最低,其主要微生物类群以乳酸菌和瘤胃球菌为主。宜宾产区浓香型白酒酿造过程微生物群落结构呈现出从多种微生物共同作用到功能微生物主要发挥作用的趋势。该研究为探究浓香型白酒酿造过程中功能微生物,解析白酒酿造机理,提升白酒品质奠定了基础。 相似文献
6.
7.
为探究解磷细菌肥对烤烟磷素吸收和磷肥利用率的影响,以云烟87为供试品种,设置解磷细菌肥(0、75 kg/hm2)与磷肥(0、1250 kg/hm2)的双因素随机区组试验,分析了烤烟根际土壤有效磷、微生物、根系活力、干物质积累量和各器官磷素吸收的变化。结果表明,解磷细菌肥配施磷肥可极显著提高烤烟根际土壤有效磷含量,显著提高烤烟根际土壤可培养细菌数量,提高烤烟根际土壤微生物AWCD,极显著提高土壤微生物对碳水化合物、氨基酸和胺类碳源的利用能力,改变微生物群落碳源代谢特征;显著提高了烤烟根系活力,促进了干物质量积累和磷素吸收,磷肥利用率显著提高了4.89%。 相似文献
8.
V. Vasta M. Daghio A. Cappucci A. Buccioni A. Serra C. Viti M. Mele 《Journal of dairy science》2019,102(5):3781-3804
The interest of the scientific community in the effects of plant polyphenols on animal nutrition is increasing. These compounds, in fact, are ubiquitous in the plant kingdom, especially in some spontaneous plants exploited as feeding resources alternative to cultivated crops and in several agro-industry by-products. Polyphenols interact with rumen microbiota, affecting carbohydrate fermentation, protein degradation, and lipid metabolism. Some of these aspects have been largely reviewed, especially for tannins; however, less information is available about the direct effect of polyphenols on the composition of rumen microbiota. In the present paper, we review the most recent literature about the effect of plant polyphenols on rumen microbiota responsible for unsaturated fatty acid biohydrogenation, fiber digestion, and methane production, taking into consideration the advances in microbiota analysis achieved in the last 10 yr. Key aspects, such as sample collection, sample storage, DNA extraction, and the main phylogenetic markers used in the reconstruction of microbial community structure, are examined. Furthermore, a summary of the new high-throughput methods based on next generation sequencing is reviewed. Several effects can be associated with dietary polyphenols. Polyphenols are able to depress or modulate the biohydrogenation of unsaturated fatty acids by a perturbation of ruminal microbiota composition. In particular, condensed tannins have an inhibitory effect on biohydrogenation, whereas hydrolyzable tannins seem to have a modulatory effect on biohydrogenation. With regard to fiber digestion, data from literature are quite consistent about a general depressive effect of polyphenols on gram-positive fibrolytic bacteria and ciliate protozoa, resulting in a reduction of volatile fatty acid production (mostly acetate molar production). Methane production is also usually reduced when tannins are included in the diet of ruminants, probably as a consequence of the inhibition of fiber digestion. However, some evidence suggests that hydrolyzable tannins may reduce methane emission by directly interacting with rumen microbiota without affecting fiber digestion. 相似文献
9.
10.