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试验建立了超高效液相色谱串联质谱测定牛奶中阿维菌素和伊维菌素药物残留的方法。确定了从牛奶中提取两种菌素药物的处理条件并优化了质谱的测定参数。两种药物在2~100 ng/mL的浓度范围内,其回归标准曲线方程的相关系数为0.998 5~0.999 6,对照品添加回收率在70.8%~93.1%%范围内,相对标准偏差(n=6)为2.91%~5.28%,检测限为1.0μg/kg。  相似文献   
2.
为建立氯唑西林(cloxacillin,CLOX)残留的酶联免疫(enzyme-linked immuno sorbent assay,ELISA)检测方法,试验采用碳化二亚胺法,将氯唑西林偶联于载体蛋白牛清蛋白(Bovine albumin,BSA)和卵清蛋白(ovalbumin,OVA),制得免疫抗原(CLOX-BSA)和包被抗原(CLOX-OVA),并通过红外光谱扫描(infrared spectroscopy,IR)鉴定表明CLOX人工抗原合成成功。用免疫抗原免疫5只小鼠,制备CLOX多克隆抗体,通过间接ELISA法测定其对CLOX的效价及特异性。结果表明:用CLOX-BSA免疫制备的抗体效价达1∶64000以上,特异性较强,对CLOX的半抑制质量浓度IC50值为(5.64±0.03)ng/mL,IC15值为(22.43±0.02)ng/mL。说明试验得到了灵敏度高、特异性强及具有开发性的抗体,可为食品安全检验试剂盒的开发提供基础。  相似文献   
3.
4.
为了建立一种用于检测动物源性食品中呋喃它酮代谢物(AMOZ)的可视化免疫亲和凝胶柱检测方法,利用对醛基苯甲酸(CPA)对AMOZ进行衍生处理得到衍生物CPAMOZ,制备CPAMOZ完全抗原,并通过免疫小鼠获取CPAMOZ多克隆抗体,使用间接ELISA法对抗体的效价及特异性进行测定。实验采用恒温振荡法将溴化氰活化的琼脂糖凝胶分别与CPAMOZ抗体、HRP抗体偶联制得CPAMOZ抗体胶和HRP抗体胶,作为亲和凝胶柱的检测层与质控层。建立AMOZ可视化免疫亲和凝胶柱分析方法,确定了该方法在酶标抗原的稀释倍数为5000、HRP胶稀释20倍、CPAMOZ抗体胶稀释15倍的条件下,达到最佳工作状态。实验结果表明CPAMOZ多克隆抗体效价为1:64000,IC_(50)值为2.19μg/L,具有良好的灵敏度及特异性。建立的AMOZ可视化免疫亲和凝胶检测柱方法检测限为4μg/L,动物源实际样品中AMOZ的检测限为2μg/kg。该方法快速便捷,符合我国高通量筛选食品中AMOZ的要求。  相似文献   
5.
为了建立氯唑西林(Cloxacillin,CLOX)可视化免疫亲和凝胶柱检测方法。实验采用活化酯法,将辣根过氧化物酶(HRP)与氯唑西林偶联,制得氯唑西林酶标抗原,并通过紫外光谱扫描鉴定表明CLOX酶标抗原合成成功。实验采用恒温振荡法,将溴化氰活化的琼脂糖凝胶分别与氯唑西林抗体、HRP抗体偶联制得氯唑西林抗体胶和HRP抗体胶,作为亲和凝胶柱的检测层与质控层。建立氯唑西林可视化免疫亲和凝胶柱分析方法,确定了该方法在酶标抗原的稀释倍数为4000、抗体胶稀释倍数为10、HRP胶稀释倍数为20、样品稀释液pH值为5.7、加样时间为60 s条件下,达到最佳工作状态。该方法检测限为25μg/L,特异性强,与哌拉西林、阿莫西林、氨苄青霉素、四环素、呋喃它酮、甲砜霉素、链霉素均无交叉反应,动物源食品实际样品中氯唑西林检出限为25μg/kg。该方法便捷、快速、可视化,适合作为高通量筛选氯唑西林的有效检测手段。  相似文献   
6.
本文建立了低共熔溶剂液相微萃取高效液相色谱法测定5种杀菌剂(三唑醇、嘧霉胺、三唑酮、烯唑醇、嘧菌环胺)的农药残留分析方法,以苯酚作为氢键给体,氯化胆碱作为氢键受体组合而成的低共熔溶剂作为提取溶剂,THF作为分散剂,形成浑浊小液滴,目标分析物被萃取到微量的DESs相中,经过离心,吸取DESs相进高效液相色谱分析。对影响萃取效率的重要因素进行选择和优化。研究表明,氯化胆碱与苯酚在1:2的比率形成的低共熔溶剂萃取效果最好,同时,在最佳的萃取条件(样品容量为5 mL,DES2为150μL,THF为150μL,超声时间为20 min,离心时间为10 min)下进行添加回收率实验,回收率在73.7%~102.3%之间,相对标准偏差(RSD)为0.7%~7.1%,最小检出限(LOD)0.026~0.052μg/L。为实际检测残留农药提供安全可靠的提取和分离技术,减少有机溶剂的使用对环境及人体健康构成的危害。  相似文献   
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