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双乙酸钠抑制产黄青霉菌的效果观察 总被引:2,自引:0,他引:2
用PDA培养基于32℃培养时,当下述防霉剂浓度皆为0.3%,SDA比丙酸钙、山梨酸钾和苯甲酸钠对产黄青霉菌有更好的抑制效果;SDA抑制产黄青霉菌的适宜浓度为0.1%~0.2%。 相似文献
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产紫青霉(Penicillium purpurogenum Li-3)β-葡萄糖醛酸苷酶可定向转化甘草酸生成单葡萄糖醛酸基甘草次酸。根据β-葡萄糖醛酸苷酶氨基酸序列的同源保守区设计简并引物,PCR扩增克隆得到β-葡萄糖醛酸苷酶编码基因pgus(GenBank登录号:EU095019),该基因全长1815bp,编码604个氨基酸,理论单亚基分子量为67.77×103,含有4个潜在的N-糖基化位点。构建原核表达载体pET-28a(+)-pgus,转化大肠杆菌BL21(DE3),获得高效表达pgus基因的重组菌。经IPTG诱导表达、Ni2+-NTA亲和层析柱纯化的重组酶PGUS-E,纯度达到95%以上,得率为25.6 mg8226;L-1,SDS-PAGE分析检测分子量约为70×103,比酶活达到6368 U8226;mg-1。 相似文献
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木霉纤维素酶基因的克隆与表达研究进展 总被引:6,自引:0,他引:6
对自然界中能够产生纤维素酶完全酶系的丝状真菌木霉的纤维素酶基因克隆与表达的研究进展进行了综述,主要包括基因克隆,转化载体,以及基因表达等分子生物学方面的研究。 相似文献
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在青霉素的发酵生产中,青霉菌的菌丝形态的控制非常关键,因为菌丝形态不仅会影响到次级代谢产物即青霉素的合成,而且会影响到菌丝过滤过程.主要对产黄青霉菌的菌丝形态进行定性研究,分析青霉素发酵过程中菌丝形态的变化规律,并结合发酵过程中工艺条件的优化,以达到改善菌丝形态的目的,使其更有利于青霉素生产. 相似文献
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平板玻璃抗霉性相关的主要工艺因素 总被引:1,自引:0,他引:1
在五个平板玻璃厂生产工艺制现场调查的基础上,测定了产品的密度,内应力,透光率等理化性能,在强化条件对各厂产品进行了霉变试验,测出霉变样品析碱量。认为提高平板玻璃抗霉性的主要工艺因素为:适当提高组成中的Al2O3,降低R2O含量; 相似文献
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副产盐酸含有机物、硫酸根等杂质,在带压解析的工艺条件下,存在闪蒸再沸器易堵塞、气体纯度低、设备管道易泄漏等问题。通过塔顶冷凝酸外排,提高氯化氢纯度;增加备用闪蒸再沸器,强制循环工艺,解决堵塞问题;控制设备制造标准和安装验收时的质量控制,避免发生泄漏;优化操作工艺,降低运行成本。改进后工艺,保证了氯化氢出口压力在0.3MPa时稳定连续运行,氯化氢杂质<10-4。 相似文献
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目的克隆并原核表达扩展青霉碱性脂肪酶(PEL)结构基因。方法提取扩展青霉总RNA,经RT-PCR扩增PEL结构基因,克隆至原核表达载体pET-28a(+),构建重组表达质粒pET-28a-PEL,转化大肠杆菌BL21(DE3),经IPTG诱导表达,SDS-PAGE分析目的蛋白的表达形式及表达量,包涵体蛋白经变性、复性后,采用NaOH滴定法测定其酶活性。结果经RT-PCR扩增获得约780bp的PEL结构基因;所构建的重组表达质粒pET-28a-PEL经酶切及PCR鉴定正确;目的蛋白的相对分子质量约为28000,以包涵体形式表达,表达量约占菌体总蛋白的10%;发酵液及复性的包涵体蛋白酶活性可达12.44U/ml。结论已成功克隆并原核表达了PEL结构基因,为获得碱性脂肪酶高产基因工程菌株奠定了基础。 相似文献
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十二烷基三乙氧基硅烷的合成工艺研究 总被引:2,自引:1,他引:1
以1-十二碳烯和三乙氧基硅烷为原料,在铂催化下通过硅氢加成反应制得十二烷基三乙氧基硅烷.研究了反应温度、反应时间、催化剂类型、用量和原料的配比对合成产物收率的影响,确立了最佳合成条件:三乙氧基硅烷和1-十二碳烯的量比之为1.05,反应时间为1 h、反应温度为120 ℃,乙烯基双封头-铂-甲苯配合体系作为催化剂且铂催化剂用量为1-十二碳烯量的10×10-6(以铂计).目标产物收率可达83.5%. 相似文献
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Masahiro Sato Kosuke Maeda Miyu Koriyama Emi Inada Issei Saitoh Hiromi Miura Masato Ohtsuka Shingo Nakamura Takayuki Sakurai Satoshi Watanabe Kazuchika Miyoshi 《International journal of molecular sciences》2016,17(9)
The introduction of multigene constructs into single cells is important for improving the performance of domestic animals, as well as understanding basic biological processes. In particular, multigene constructs allow the engineering and integration of multiple genes related to xenotransplantation into the porcine genome. The piggyBac (PB) transposon system allows multiple genes to be stably integrated into target genomes through a single transfection event. However, to our knowledge, no attempt to introduce multiple genes into a porcine genome has been made using this system. In this study, we simultaneously introduced seven transposons into a single porcine embryonic fibroblast (PEF). PEFs were transfected with seven transposons containing genes for five drug resistance proteins and two (red and green) fluorescent proteins, together with a PB transposase expression vector, pTrans (experimental group). The above seven transposons (without pTrans) were transfected concomitantly (control group). Selection of these transfected cells in the presence of multiple selection drugs resulted in the survival of several clones derived from the experimental group, but not from the control. PCR analysis demonstrated that approximately 90% (12/13 tested) of the surviving clones possessed all of the introduced transposons. Splinkerette PCR demonstrated that the transposons were inserted through the TTAA target sites of PB. Somatic cell nuclear transfer (SCNT) using a PEF clone with multigene constructs demonstrated successful production of cloned blastocysts expressing both red and green fluorescence. These results indicate the feasibility of this PB-mediated method for simultaneous transfer of multigene constructs into the porcine cell genome, which is useful for production of cloned transgenic pigs expressing multiple transgenes. 相似文献
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