外源添加物质对黑莓清汁花色苷稳定性和抗氧化活性的影响

本文研究了咖啡酸、阿魏酸、单宁酸、黄芩素、茶多酚、没食子酸、原儿茶酸、芦丁等8种外源辅色素对黑莓清汁花色苷辅色效果、热稳定性、光稳定性和体外抗氧化活性的影响。结果表明:咖啡酸、原儿茶酸、茶多酚、没食子酸、单宁酸对黑莓清汁花色苷的辅色效果影响较显著(p<0.05),最适浓度为0.1 mmol/L,而芦丁的最佳辅色浓度为0.4 mmol/L;实验所选辅色素能够在一定程度上提高黑莓清汁花色苷的热稳定性,其中没食子酸、阿魏酸、咖啡酸对其影响效果显著(p<0.05),分别使黑莓清汁花色苷的热降解半衰期延长了6.06、2.07和1.39倍。此外,原儿茶酸、阿魏酸、芦丁能够显著提高黑莓清汁花色苷的光稳定性、DPPH自由基清除能力和总还原力(p<0.05);没食子酸和单宁酸的辅色作用降低了黑莓清汁花色苷的光稳定性。黄芩素、阿魏酸、咖啡酸、芦丁等外源物质可作为黑莓清汁花色苷有效的辅色素。     

不同有机酸体系中紫薯花色苷热降解稳定性研究

研究了紫薯花色苷在乳酸、酒石酸、苹果酸、乙酸、柠檬酸体系中的热降解稳定性,通过建立紫薯花色苷热降解动力学模型,分析紫薯花色苷在不同有机酸体系中的热降解速率常数k、半衰期t1/2及热降解活化能Ea,为提高紫薯花色苷的稳定性提供实验参考和理论依据。结果表明:紫薯花色苷的热降解符合一级反应动力学模型,随着温度的升高,紫薯花色苷降解速率明显加快;在有机酸体系中,紫薯花色苷的热降解活化能Ea及半衰期t1/2较空白组均有所提高,即稳定性增强。有机酸辅色后Ea值分别提高了35.71%(酒石酸)、32.06%(乳酸)、20.61%(苹果酸)、12.60%(乙酸)、45.31%(柠檬酸)。其中柠檬酸、酒石酸、乳酸的作用效果较好,可考虑作为辅色剂。      

不同有机酸对紫甘蓝花色苷辅色效应及热稳定性对比分析

在水体系中研究不同有机酸对紫甘蓝花色苷的辅色效应及热稳定性。结果表明:分别添加酒石酸、芥子酸、阿魏酸、单宁酸和咖啡酸,紫甘蓝花色苷吸光度下降速率减缓、最大吸收波长红移、褐变指数降低,说明有机酸对花色苷有辅色效应,且辅色效应随有机酸浓度增加而增强,其中酒石酸辅色效应较其他有机酸强;在70、80和90℃下有机酸辅色花色苷符合一级降解动力学模型,活化能Ea均有提高,酒石酸组Ea提高67.70%,t_(1/2)分别为42.52、36.87和13.15 h,显著高于对照的9.47、8.25和6.48 h,花色苷热稳定性显著提高(p0.05),吉布斯自由能ΔG及焓变ΔH为正、熵ΔS为负,即辅色是自由度下降的吸热非自发过程;花色苷辅色后L*随温度升高和时间延长呈上升趋势,a*下降,酒石酸组显著高于对照(p0.05);有机酸辅色前后花色苷组分未变化,推测该过程为非共价结合。由此说明有机酸对紫甘蓝花色苷有辅色效应,可考虑作辅色剂提高花色苷在食品加工中的稳定性。     

食品酸味剂、甜味剂及增稠剂对阴香花色苷稳定性的影响

阴香果实花色苷粗提物以DM-18弱极性大孔吸附树脂精制及半制备HPLC纯化后为供试样品,研究了食品加工常用的酸味剂、甜味剂及增稠剂对阴香花色苷稳定性的影响。结果酸味剂中高浓度柠檬酸和酒石酸对花色苷具有辅色作用,乙酸与低浓度柠檬酸对花色苷的稳定性无影响,乳酸及低浓度酒石酸具有促进阴香花色苷降解的作用。可溶性淀粉、β-环状糊精及琼脂对花色苷的稳定性无不利影响,较高浓度可溶性淀粉具有明显的护色作用。麦芽糖、乳糖及蔗糖及对阴香花色苷的辅色显著,1%及2.5%葡萄糖对阴香花色苷稳定性无影响,5%以上葡萄糖有加速花色苷具降解作用。      

辅色剂对蓝莓花色苷的辅色作用及其稳定性的影响

研究了几种辅色剂对蓝莓花色苷的辅色作用,并研究了微波、不同温度和光照条件下辅色剂丁二酸、苹果酸、对羟基苯甲酸、阿魏酸对蓝莓花色苷稳定性的影响。结果表明:丁二酸、苹果酸、对羟基苯甲酸、阿魏酸对蓝莓花色苷具有辅色作用,浓度为0·05mol/L辅色效果最佳,而且能够增强花色苷光热稳定性,但对微波处理的花色苷辅色效果次之。总之,在这4种辅色剂中,丁二酸、苹果酸、对羟基苯甲酸对蓝莓花色苷的稳定性较强,阿魏酸偏弱。     

辅色剂对蓝莓花色苷的辅色作用及其稳定性的影响

研究了几种辅色剂对蓝莓花色苷的辅色作用,并研究了微波、不同温度和光照条件下辅色剂丁二酸、苹果酸、对羟基苯甲酸、阿魏酸对蓝莓花色苷稳定性的影响。结果表明:丁二酸、苹果酸、对羟基苯甲酸、阿魏酸对蓝莓花色苷具有辅色作用,浓度为0·05mol/L辅色效果最佳,而且能够增强花色苷光热稳定性,但对微波处理的花色苷辅色效果次之。总之,在这4种辅色剂中,丁二酸、苹果酸、对羟基苯甲酸对蓝莓花色苷的稳定性较强,阿魏酸偏弱。      

咖啡酸对紫玉米花色苷的辅色作用研究

研究咖啡酸对紫玉米花色苷溶液的吸收光谱、颜色和花色苷组分的影响。结果表明,添加咖啡酸后,花色苷溶液的颜色加深,最大吸收峰发生蓝移,这表明咖啡酸对紫玉米花色苷具有辅色效应。热稳定性实验结果表明,添加咖啡酸能抑制花色苷因热褪色的速率,而增加花色苷褪色反应的半衰期和活化能。经高效液相色谱/ 电喷雾质谱联用技术检测结果表明,咖啡酸对紫玉米花色苷的辅色作用是通过咖啡酸与不同的花色苷发生加成形成矢车菊素-3- 葡萄糖苷- 乙烯基儿茶酚、天竺葵素-3- 葡萄糖苷- 乙烯基儿茶酚和芍药素-3- 葡萄糖苷- 乙烯基儿茶酚等花色苷衍生物而实现的。     

不同酚酸对三华李清汁贮藏期间色泽稳定性的比较分析

为增强三华李清汁中花色苷的稳定性,本实验选取阔马酸,阿魏酸,绿原酸,咖啡酸,香草酸5种不同酚酸作为辅色剂,对三华李清汁进行辅色研究,分别在4℃、25℃、37℃条件下进行21 d货架期贮藏,每3 d取样测定三华李清汁的色泽、花色苷含量、抗氧化活性、透光率、可溶性固形物、p H等理化指标。研究结果表明:随着贮藏时间和贮藏温度的增加,三华李清汁透光率整体呈下降趋势,花色苷降解速率加快,加入酚酸辅色可使三华李清汁维持较好的色泽,提高果汁的品质。不同酚酸辅色效果有所差异。其中阔马酸辅色组的颜色变化较大,在37℃贮藏第21 d透光率为7.74%,花色苷保留率仅为15.32%,辅色效果不显著;相比较之下,添加阿魏酸和绿原酸辅色的三华李清汁总色差值TCD变化较小,贮藏期间中色泽更加稳定。在37℃贮藏第12 d,其花色苷保留率分别提高了9.91%和10.36%,且对果汁的其余理化色指标影响均较小,辅色作用较为显著,故可考虑将阿魏酸和绿原酸作为辅色剂应用于三华李清汁。     

单宁酸对紫玉米芯花色苷稳定性影响的研究

在不同pH、温度和光照条件下研究了单宁酸对紫玉米芯花色苷稳定性的影响。结果表明,在pH 4.0条件下,单宁酸对紫玉米芯花色苷的向红效应(Amax)和增色效应(λmax)的效果要好于pH 3.0条件下。与对照相比,同一温度和光照条件下添加单宁酸的紫玉米芯花色苷降解速率低,半衰期长,耐热和光性好。单宁酸能增强花色苷对光、热的稳定性,对紫玉米芯花色苷有辅色作用。     

加工方法对紫甘薯花色苷含量及组成的影响

目的:研究烤、炸和蒸3种加工方法对紫甘薯花色苷的影响.方法:采用HPLC-MS法测定3种加工方法对紫甘薯花色苷含量及其组成的变化.结果:3种加工方法均可降低紫甘薯花色苷含量,其花色苷残余率:炸薯93.7％,蒸薯87.1％和烤薯60.0％.紫甘薯中双酰化的花色苷稳定性高于单酰化花色苷,咖啡酸酰化的花色苷组分稳定性高于对羟基苯甲酸酰化花色苷.结论:炸和蒸加工方法可有效维持紫甘薯花色苷含量.     

紫薯花色苷在贮藏过程中的降解特性

本研究通过高效液相色谱-串联质谱（high performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry,HPLC-MS/MS）法分析鉴定‘鄂薯12号’紫薯的花色苷成分,采用pH示差法和HPLC法研究该紫薯花色苷提取液在4、20、35 ℃贮藏98 d期间总花色苷和各单体花色苷的变化规律,并在此基础上研究了花色苷的降解动力学以及褐变指数和聚合物颜色指数。结果表明：从‘鄂薯12号’紫薯提取物中鉴定出13 种花色苷,主要为矢车菊素-3-槐糖苷-5-葡糖苷和芍药素-3-槐糖苷-5-葡糖苷与对羟基苯甲酸、阿魏酸或咖啡酸形成的酰基化花色苷;贮藏期间总花色苷和各单体花色苷的含量呈下降趋势,花色苷的降解符合一级动力学模型;4、20 ℃和35 ℃贮藏条件下总花色苷半衰期分别为228.8、48.1 d和32.6 d;在相同糖苷配体情况下,矢车菊素类花色苷的半衰期要短于芍药素;在相同花色素配体情况下,酰基化花色苷的半衰期要长于未酰基化花色苷,且二酰化花色苷的半衰期长于单酰化花色苷;褐变指数和聚合物颜色指数随贮藏时间的延长和贮藏温度的升高而增大,并且聚合物颜色指数与花色苷含量之间呈指数关系。     

紫薯花青素提取条件优化及淀粉等产物的制备

以‘紫罗兰’紫薯为原料,研究同步提取紫薯花青素以及制备紫薯淀粉、纤维素和紫薯蛋白的工艺及参数。紫薯与酸乙醇（pH 2）混合破碎、过滤、沉淀分离淀粉;将滤渣和分离淀粉后上清液混合,用微波辅助法提取花青素并优化提取条件;花青素提取液沉淀分离紫薯蛋白;提取花青素的滤渣制备紫薯纤维素。结果表明：微波辅助提取紫薯中花青素的最佳工艺条件为微波时间4 min、微波温度52 ℃、料液比1∶22.40（g/mL）、乙醇体积分数62%（pH 2）,在此条件下紫薯花青素的提取率（93.64±0.69）%、粗提物中花青素含量（9.58±0.20） mg/g。制备的紫薯淀粉质量分数（95.77±0.41）%、得率（占总淀粉质量分数）（73.06±1.03）%;滤渣粉中纤维素含量（117.11±2.69） mg/g;制备的紫薯蛋白中蛋白质含量（524.78±24.84） mg/g。该制备方法能够提高紫薯的利用率,降低生产成本。     

紫甘薯花色素与胰蛋白酶相互作用特性

测定紫甘薯花色素与胰蛋白酶反应前后酶的催化活性、催化反应动力学并采用紫外光谱法、荧光光谱法和红外光谱法研究紫甘薯花色素与胰蛋白酶相互作用特性。结果表明：紫甘薯花色素对胰蛋白酶催化活性有明显的抑制作用,抑制类型为可逆的竞争性抑制,抑制常数Ki＝6.16×10－4 mmol/L,当紫甘薯花色素与胰蛋白酶的物质的量比为140∶1,在 37 ℃反应 15 min,抑制率达到38.61%,而反应时间对催化活性的影响不明显;紫甘薯花色素可使胰蛋白酶的内源荧光猝灭,猝灭类型为静态猝灭,室温下猝灭常数Kq为1.73×1012 L/（mol·s）,结合常数KA为3.88×104 L/mol,结合位点数n为0.86;热力学参数确定两者之间的作用力主要为氢键和范德华力;根据Förster能量转移理论得出它们的结合距离为3.56 nm;红外光谱经过去卷积、二阶导数处理得知与紫甘薯花色素作用后胰蛋白酶的α-螺旋含量降低,β-折叠含量升高。     

紫薯中绿原酸类化合物标准品的制备

从紫薯中提取制备高纯度、市场价值较高的绿原酸类化合物标准品。紫薯切片,采用沸水提取、大孔树脂吸附和凝胶柱色谱分段,然后以反相制备液相色谱获得高纯标准品,最后以核磁共振技术确定化学结构。从紫薯中制备得到异绿原酸A、异绿原酸B、异绿原酸C和3,4,5-O-三咖啡酰基奎宁酸,高效液相色谱检测表明这些化合物的纯度均在98%以上。本研究建立的制备工艺可高效地将紫薯中绿原酸类化合物富集,并快速获得高纯样品,有效地避免了紫薯花色苷类化合物对产品色泽和纯度的影响。     

浸提法、超声波法和微波法提取紫薯花色苷的抗氧化性比较研究

本实验通过羟自由基（·OH）清除率、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼（1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH）自由基清除率、还原力、超氧阴离子自由基（O2－·）清除率、总抗氧化性和金属螯合能力6 个抗氧化测定方法对浸提法、微波辅助提取法和超声波辅助提取法提取的紫薯花色苷的抗氧化活性进行了综合评价。结果表明：除金属螯合能力较弱外,其余5 种抗氧化活性检测结果均表明紫薯花色苷具有一定的抗氧化能力,且5 种抗氧化活性检测结果一致性地表明微波辅助提取法、超声波辅助提取法和浸提法提取的紫薯花色苷抗氧化能力依次降低,它们都总体表现为对·OH、DPPH自由基、O2－·的清除能力较强,还原力和总抗氧化性次之,金属螯合能力最差;采用超声波或微波辅助提取有助于保持提取的紫薯花色苷的抗氧化活性,且微波辅助提取法效果最好;对紫薯花色苷抗氧化活性的检测和判定可以·OH、DPPH自由基和O2－·清除能力作为主要指标。     

含血管紧张素转化酶抑制肽的酪蛋白水解物与紫薯提取物联用对原发性高血压大鼠血压的影响

以富含血管紧张素转化酶（angiotensin converting enzyme,ACE）抑制肽的酪蛋白水解物和富含花青素的紫薯提取物为原料,灌胃12 周龄雄性原发性高血压大鼠（spontaneously hypertensive rats,SHR）和正常雄性Wistar大鼠,研究富含ACE抑制肽的酪蛋白水解物和紫薯提取物对SHR血压的影响。用不同剂量的酪蛋白水解物（10、20、30、40 mg/kg,以体质量计,下同）和紫薯提取物（5.4、10.8、21.6、32.4 mg/kg,花青素含量为9.25%）分别灌胃SHR和Wistar大鼠。然后选用酪蛋白水解物的2 个剂量组分别与紫薯提取物的3 个剂量组联合灌胃SHR。用智能无创血压计测量SHR血压变化。结果表明：富含ACE抑制肽的酪蛋白水解物和富含花青素的紫薯提取物,在实验灌胃剂量范围内均具有较好的降压效果,而且两者联用进行单次灌胃后降压效果显著提高（P＜0.05）。其中酪蛋白水解物（10 mg/kg）分别与紫薯提取物3 个剂量（5.4、10.8、21.6 mg/kg）联合灌胃SHR后4 h或者5 h,血压分别降低了（24.67±4.46）、（28.47±3.96）、（41.51±4.89） mmHg。用酪蛋白水解物（20 mg/kg）分别与紫薯提取物的3 个剂量（5.4、10.8、21.6 mg/kg）联合灌胃SHR后5 h或者6 h,SHR血压分别降低了（38.03±3.46）、（43.92±2.92）、（47.20±4.31） mmHg。两者联用灌胃后对Wistar正常大鼠的血压无影响。另外,酪蛋白水解物2 个剂量（10、20 mg/kg）和紫薯提取物（10.8 mg/kg）分别联合使用,间隔4 h灌胃1 次,每天灌胃2 次,SHR大鼠血压较灌胃前分别降低了（28.20±3.02）、（43.54±2.55） mmHg,而且能较长时间维持在较低血压水平。因此,富含ACE抑制肽的酪蛋白水解物和富含花青素的紫薯提取物联合食用对SHR的降压具有显著效果。     

紫薯花青素的提取及其在VC含量测定中的应用

从紫薯中提取花青素,该花青素在530 nm波长处有特征吸收峰,分子质量范围在850～1 020 u之间。利用紫薯花青素替代GB/T 6195-1986《水果、蔬菜维生素C含量测定法（2,6-二氯靛酚测定法）》测定夏橙和西红柿中VC含量。结果表明：夏橙和西红柿中VC的含量分别为（25.33±0.34）、（20.41±0.32） mg/100 g;紫薯花青素法的加标回收率为95.4%～98.6%,相对标准偏差（relative standard deviation,RSD）为1.18%～1.22%;2,6-二氯靛酚法的加标回收率为96.5%～98.7%,RSD为0.86%～0.88%。建立的利用紫薯花青素替代GB/T 6195-1986中2,6-二氯靛酚测定水果、蔬菜中VC含量的方法具有安全、廉价的特点,其准确度与2,6-二氯靛酚法滴定法相当。     

紫薯花青素体外抗氧化及对H2O2诱导HepG2细胞氧化损伤的保护作用

目的：研究紫薯花青素的体外抗氧化作用,建立H2O2诱导HepG2细胞氧化损伤模型,初步评价紫薯花青素的抗氧化应激作用。方法：紫薯干粉经过提取、纯化制得紫薯花青素干粉,分别测定紫薯花青素的总还原力、对羟自由基（·OH）、超氧阴离子自由基（O2－•）的清除能力以及对大鼠红细胞溶血的保护作用。建立H2O2诱导HepG2细胞氧化损伤模型,采用四甲基偶氮唑蓝（methyl thiazolyl tetrazolium,MTT）法检测不同质量浓度紫薯花青素对HepG2细胞氧化损伤的保护作用。结果：紫薯花青素的还原力和VC基本相当;紫薯花青素对·OH有很好的清除效果,在实验浓度范围内有明显的剂量-效应关系;随紫薯花青素浓度的升高,对O2－•的清除作用增强,呈现良好的量-效关系,单位浓度的紫薯花青素对O2－•的清除作用比2,6-二叔丁基-4-甲基苯酚（butylated hydroxytoluene,BHT）效果好。不同质量浓度的紫薯花青素均可抑制H2O2诱导的大鼠红细胞溶血,且随着紫薯花青素质量浓度的升高,大鼠红细胞的溶血度降低,呈现良好的量-效关系。H2O2诱导的HepG2细胞氧化损伤模型中,50～1 600 μg/mL的紫薯花青素均能够抑制H2O2引起的HepG2细胞凋亡,当紫薯花青素质量浓度达到800 μg/mL时,HepG2细胞存活率为（88.03±7.48）%。结论：紫薯花青素具有良好的体外抗氧化作用,并对H2O2诱导HepG2细胞氧化损伤具有明显的保护作用,研究初步揭示了紫薯花青素具有体外抗氧化作用。     

响应曲面法优化紫薯中花色苷类物质的提取及抗氧化活性研究

以紫薯为原料,利用热水提取紫薯花色苷,以提取物中紫薯花色苷的含量和抗氧化活性作为衡量提取工艺的指标,并利用响应曲面法进行实验设计及工艺参数优化。结果表明:紫薯花色苷的最佳提取条件为柠檬酸质量分数3%,提取温度63℃,提取时间2h,液料比为40∶1m L/g。在此条件下紫薯花色苷的含量可达7.21mg/g,同时抗氧化活性(IC50值)为123.93μg/m L。该提取方法准确、可靠,可用于紫薯中花色苷类物质的提取,同时提取物具有最强的抗氧化活性。      

Four phenolic acids from purple sweet potato and their effects on physicochemical,digestive and structural characteristics of starch

Liquid chromatography coupled with tandem mass spectrometry (LC–MS/MS) was employed to investigate free phenols that were released from purple sweet potato (PSP) by alkaline, acid and enzymatic hydrolysis. Four phenolic acids, including ferulic, isoferulic, 4-hydroxybenzoic and caffeic acids, were identified. Based on their effects on the characteristics of purple sweet potato starch (PSPS), the four phenolic acids were studied. Furthermore, scanning electron microscopy (SEM), Fourier transform infrared spectroscopy (FT–IR) and X-ray diffraction (XRD) techniques were employed to explore the microstructures of the complexes of the phenolic acids and PSPS. The obtained results demonstrated that the pasting, thermal, retrogradation, as well as digestive properties of PSPS were all influenced by the phenolic acids which interacted with PSPS through noncovalent hydrogen bonds. The influence of the four phenolic acids on the properties of PSPS was in the descending order: 4-hydroxybenzoic acid > ferulic acid > caffeic acid > isoferulic acid.