夏枯草水溶性多糖乙醇分级纯化及其理化性质研究

研究了夏枯草水溶性多糖的理化性质。采用水提醇沉法从夏枯草果穗中得到夏枯草多糖,将所得多糖复溶于水,依次在乙醇体积分数为20%、30%、40%、50%、60%和70%的条件下分级醇沉多糖,得到PVLP-1、PVLP-2、PVLP-3、PVLP-4、PVLP-5和PVLP-6等六个多糖组分。测定各组分的糖含量、糖醛酸含量及蛋白质含量等基本理化指标,并用气相色谱法测定它们的单糖组成,同时对其进行紫外和红外光谱扫描考察其光谱性质。结果表明,PVLP-1、PVLP-2、PVLP-3、PVLP-4、PVLP-5和PVLP-6均为酸性多糖,蛋白质含量较高。六个组分都含有鼠李糖、阿拉伯糖、木糖、甘露糖、葡萄糖和半乳糖,其中木糖和阿拉伯糖含量最高,甘露糖最低,不含核糖和岩藻糖,但各组分中单糖具体摩尔组成比例不同。     

无花果多糖的部分理化性质研究

对无花果渣中的无花果多糖进行分离纯化,对其理化性质、得率、含量、分子量分布和单糖组成进行了分析。无花果多糖为灰色粉末,易溶于水,难溶于有机溶剂。碘-碘化钾反应阴性,为非淀粉多糖;得率为4.1%,总糖含量91%。紫外扫描表明不含蛋白质和核酸,红外光谱显示主要为吡喃多糖,分子量在5.92×105~1.95×106之间,主要由鼠李糖、阿拉伯糖、木糖、甘露糖、葡萄糖和半乳糖组成,其摩尔比值为1.93∶3.86∶0.46∶0.55∶7.42∶2.87。     

香薷多糖的乙醇分级纯化及其性质

采用热水浸提法从香薷中得到多糖提取物,然后采用乙醇分级沉淀法纯化香薷多糖,收集得到乙醇体积分数为20%、30%、40%、50%、60%、70% 条件下析出的多糖沉淀物。之后经Sevag 法脱除多糖中的游离蛋白,得到纯化后的6 个香薷多糖组分HMP-1、HMP-2、HMP-3、HMP-4、HMP-5 和HMP-6。应用紫外和红外光谱检测HMP-1、HMP-2、HMP-3、HMP-4、HMP-5 和HMP-6 的光谱性质,测定糖含量、可溶性蛋白质含量和糖醛酸含量,并用气相色谱法测定单糖组成。结果表明：HMP-1、HMP-2、HMP-3、HMP-4、HMP-5和HMP-6 均为酸性多糖,蛋白含量较高。HMP-1 和HMP-2 主要含有阿拉伯糖和葡萄糖,HMP-3 主要含有阿拉伯糖、葡萄糖、半乳糖和核糖,HMP-4 主要含有阿拉伯糖、葡萄糖和半乳糖,HMP-5 和HMP-6 主要含有阿拉伯糖、葡萄糖、半乳糖和甘露糖。此外,6 个多糖组分均含有少量的鼠李糖、木糖,但单糖间物质的量比相差较大。     

牡丹花蕊多糖三相分离纯化及其理化性质

采用三相分离法纯化牡丹花蕊多糖,并对其理化性质进行分析。结果表明,纯化的最优条件是pH 7、硫酸铵质量分数10%、叔丁醇与提取液体积比为2. 0,该条件下多糖回收率为69%,蛋白质去除率为73%,纯化后多糖纯度为99. 24%,色素清除率为95. 36%; PMP柱前衍生化高效液相色谱(PMP-HPLC)分析表明,牡丹花蕊多糖的单糖组成为鼠里糖、半乳糖醛酸、葡萄糖、半乳糖和阿拉伯糖,其摩尔比为1. 24:1. 59:2. 00:9. 11:1. 68;傅立叶红外变换光谱(Fourier transform infrared spectroscopy,FR-IR)与氢核磁共振波谱(~1H nuclear magnetic resonance,1H NMR)结果表明,牡丹花蕊多糖是一种以半乳吡喃糖为主的酸性多糖,并且同时存在α-构型和β-构型,以β-构型为主。     

天麻水溶性多糖分离纯化及理化性质研究

本实验研究云南野生天麻（GastrodiaelataBlume）多糖的分离纯化及理化性质,实验结果表明,天麻粗多糖提取的最佳工艺条件为温度50℃、浸提时间3h、料液比1：10（w／v）,乙醇浓度80％。在该条件下天麻粗多糖得率约为9．67％（干重）。天麻水溶性多糖（WPGB）经Sevag法脱蛋白、透析、乙醇沉淀、DEAE．52纤维素层析及SephadexG-100层析分离纯化得到WPGB．A．H和WPGB—A．L,经高效液相色谱仪分析证明,WPGB．A．H为纯品,且得率为0．824％（干重）,经过其理化性质鉴定表明,WPGB．A．H不含蛋白质、核酸、糖醛酸,为非淀粉类多糖,其平均分子质量为28840D。     

生姜皮多糖的分离纯化及其结构组成分析

以生姜皮为原料,经热水浸提法,乙醇醇沉得到生姜皮粗多糖。再经DEAE-纤维素-52阴离子交换柱和Sephadex?G-100凝胶柱对所得粗多糖进行层析纯化,得到3种水溶性生姜皮多糖(GE-1、GE-2、GE-3)。利用高效液相色谱与蒸发光散射检测器联用测定各多糖组分的分子质量,利用柱前衍生高效液相色谱法分析各多糖组分的单糖组成,通过紫外光谱扫描、红外光谱扫描进一步分析各组分多糖结构。结果表明3种纯化多糖组分总糖含量分别为(98.06±0.15)%、(97.41±0.42)%、(97.89±0.22)%,分子质量分别为462、194 k D和376 k D。GE-1的单糖组成主要为甘露糖、葡萄糖、木糖,含有微量的半乳糖,其物质的量比为1.25∶6∶1;GE-2的单糖组成主要为甘露糖、葡萄糖和岩藻糖,其物质的量比为2.51∶9.25∶1;GE-3的单糖组成主要为甘露糖、核糖、半乳糖、阿拉伯糖,其物质的量比为17.39∶1∶1.89∶1.23。紫外光谱扫描结果显示3种多糖组分无明显的核酸和蛋白质吸收峰,红外光谱结果分析得出GE-1、GE-2和GE-3含有多糖类物质的特征吸收峰。     

巢湖蓝藻酸性多糖的理化性质及其体外抗氧化作用

目的：以从巢湖蓝藻中分离纯化的一种多糖（acidic polysaccharide from Cyanobacteria of Chaohu,CHAP）为研究对象,对其纯度、分子质量、光谱特征、单糖组成、抗氧化作用进行研究,旨在为水华蓝藻资源进行综合开发利用提供有价值的参考。方法：采用60 ℃的热水抽提蓝藻,采用硫酸铵去除其中蛋白质,粗多糖经DEAE-52阴离子交换层析柱分离并用Sephadex G-150进行纯化得到纯化多糖CHAP。结果：CHAP中多糖和蛋白质含量分别为91.49%和0.18%,紫外-可见光谱表明CHAP不含核酸,高效液相色谱（high performance liquid chromatography,HPLC）测定CHAP的分子质量为2.209×105 D,离子色谱（ion chromatography,IC）表明CHAP由6.36%的阿拉伯糖、35.47%的葡萄糖、5.03%的木糖、17.09%的半乳糖、27.36%的甘露糖及一种未知单糖构成。红外光谱表明CHAP是具有α-D-半乳吡喃糖的特征吸收峰的吡喃糖,CHAP的抗氧化作用表明：CHAP对1,1-二苯基-2-三硝基苯肼（1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH）自由基和超氧阴离子自由基（O2－·）有较强的清除能力,其IC50分别为276 μg/mL和186.05 μg/mL。CHAP对羟自由基（·OH）的清除能力较弱,清除率不到10%。     

印度块菌多糖的纯化及其理化性质研究

以云南产印度块菌为原料,采用水提醇沉法从其子实体中提取粗多糖,经过Sevage法脱蛋白、DEAE-52纤维素柱层析分离,得到3种多糖组分PTI-1、PTI-2、PTI-3,选择PTI-2通过Sephadex G-100柱进一步纯化,得到了均一纯多糖,命名为PTI-2A,并对PTI-2A进行基础理化测定。结果表明:PTI-2A分子量为193388.2u,易溶于水、稀酸、稀碱,不溶于甲醇、丙酮、氯仿、乙醚和二甲基亚砜等有机溶剂,不含蛋白质、核酸、酚类、淀粉和游离单糖。     

白灵菇菌丝体多糖的分离纯化及理化性质研究

研究白灵菇菌丝体粗多糖的分离纯化技术,并对得到的多糖进行纯度鉴定及理化性质研究。结果表明,白灵菇菌丝体多糖（PNMP）经DEAE-Cellulose52和Sephadex G-200柱层析后得到单一组分PNMPⅢ-a,经分析鉴定,PNMPⅢ-a为不含双糖、糖醛酸和核酸的非淀粉类的均一多糖;其相对分子质量为15213Da。PNMPⅢ-a完全酸水解后,经高效液相色谱分析确定其糖基的组成为葡萄糖（Glc）、鼠李糖（Rha）、木糖（Xyl）和核糖（Nbo）。红外光谱分析表明,PNMPⅢ-a是一种含有氨基、硫酸酯键、β-糖苷键和α-D葡萄糖的蛋白多糖。      

印度块菌多糖的纯化及其理化性质研究

以云南产印度块菌为原料,采用水提醇沉法从其子实体中提取粗多糖,经过Sevage法脱蛋白、DEAE-52纤维素柱层析分离,得到3种多糖组分PTI-1、PTI-2、PTI-3,选择PTI-2通过Sephadex G-100柱进一步纯化,得到了均一纯多糖,命名为PTI-2A,并对PTI-2A进行基础理化测定。结果表明:PTI-2A分子量为193388.2u,易溶于水、稀酸、稀碱,不溶于甲醇、丙酮、氯仿、乙醚和二甲基亚砜等有机溶剂,不含蛋白质、核酸、酚类、淀粉和游离单糖。      

山药多糖RDPS-I组分的纯化及理化性质的研究

山药经水浸提分离 ,浸提液脱蛋白 ,透析 ,乙醇沉淀物经DEAE -5 2纤维素及SephadexG -10 0色谱纯化得白色粉末状多糖RDPS -I。SepharoseCL -6B凝胶色谱分析表明RDPS -I为多糖纯品。定性化学反应表明RDPS -I不含核酸、蛋白质、酚类物质和糖醛酸 ,是一种非淀粉类中性纯粹多糖 ,比旋光度 [α] 2 2D(H2 O)为 +188 4(c =0 8) ,特性粘度 [η]为 16 48× 10 -3 (mL/g) ,相对分子质量为 42 2 0 0 ,完全酸水解后纸层析及气相色谱分析确定RDPS -I的糖基组成为葡萄糖、甘露糖和半乳糖 ,摩尔比为 1∶0 37∶0 11。     

Physicochemical Properties and Antioxidant Capacity of 3 Polysaccharides from Green Tea, Oolong Tea, and Black Tea

ABSTRACT:  Three polysaccharide-rich fractions named GTPS, OTPS, and BTPS were isolated from green tea, oolong tea, and black tea, respectively. Chemical characteristics, glycosidase inhibitory effects, and antioxidant properties of the 3 fractions were compared. Monosaccharides of GTPS were composed of D-rhamnose, L-arabinose, D-xylose, D-mannose, D-galactose, and D-glucose. But there were no xylose and mannose detected in OTPS and BTPS. The molecular weight distributions were decreased from 9.2 to 251.5 KDa to 3.8 to 32.7 KDa with the fermentation of the tea from green tea to black tea. BTPS showed the highest α-glucosidase inhibitory activity, antioxidant activities on hydroxyl radicals and DPPH radicals. The differences in antioxidant activities and glycosidase inhibitory properties among the 3 polysaccharide-rich fractions appeared to be related to differences in monosaccharide composition and molecular weight distribution of the polysaccharide.
PRACTICAL APPLICATION: Diabetes mellitus (DM) is one of the primary threats to human health due to its increasing prevalence, chronic course, and disabling complications. Control of postprandial hyperglycemia and inhibition of oxidative stress are suggested to be important in the treatment of diabetes. Many efforts had been made to search for effective and safe α-glucosidase inhibitors and antioxidants from natural materials to develop a physiological functional food or lead compounds for curing diabetes. Coarse tea was used to cure diabetics in people in China and Japan. The hypoglycemic activity increased with the contents of polysaccharide in coarse tea. Many studies have focused on the hypoglycemic activities of tea polysaccharides, but little is known about the glycosidase inhibitory effects of tea polysaccharide. The aim of this study was to find a tea polysaccharide with the best potential for exploitation in curing diabetes.     

桑黄菌丝体多糖的分离纯化及理化性质分析

研究桑黄粗多糖的分离和纯化工艺,并对多糖组分进行理化性质分析。结果表明：经DEAE-52纤维素离子交换层析和Sephadex G-100凝胶过滤层析得到两个组分P-47000和P-8700;经高效液相色谱分析证明,两组分均为纯品,且不含蛋白质、核酸,为非淀粉类多糖,分子质量分别为4.74×104D和8.71×103D,均由鼠李糖、阿拉伯糖、木糖、葡萄糖、半乳糖组成,P-47000中各单糖物质的量比为3.47:1.99:1:63.27:13.44,P-8700中各单糖物质的量比为10.46:1:1.03:182.75:30.94。     

大粒车前子麸壳多糖的分离纯化及部分理化性质

以大粒车前子麸壳为研究对象,提取水溶性多糖组分并对其部分理化性质进行分析。车前子麸壳水提粗多糖经过SephacrylTMS-400 HR葡聚糖凝胶柱得到纯化的多糖组分（polysaccharide from bran of Plantago asiatica L.,PBPL）。结果显示：PBPL为均一多糖,平均分子质量为619 651 D,糖含量、蛋白质含量和糖醛酸含量依次为（71.420±0.007）%、（6.07±0.02）%、（20.74±0.05）%。PBPL含有鼠李糖、阿拉伯糖、甘露糖、葡萄糖及半乳糖5 种单糖,物质的量比为2.24∶1.87∶1.00∶3.24∶3.49,糖醛酸主要是半乳糖醛酸。红外光谱中有多糖、蛋白、糖醛酸以及β-吡喃糖环特征吸收峰。     

亚麻籽胶中酸性多糖和中性多糖的分离纯化

采用十六烷基三甲基溴化胺 (CTAB)络合法 ,利用离子交换柱层析和凝胶柱层析从亚麻籽胶中分离得到酸性多糖 (AFM -1 )和中性多糖 (NFM -1 )纯品 ,其分子质量分别为 7 62× 1 0 5u和 1 1 9× 1 0 6u ,总糖含量分别为 5 8 92 %和 84 93%,糖醛酸含量分别为 33 5 5 %和 6 5 8%,AFM-1中C、H和N的含量分别为 2 8 0 4%、5 89%和 0 80 %,红外光谱测定表明 ,AFM -1和NFM -1具有多糖的特征吸收 ,并且其糖环均为吡喃环。     

铁观音茶末多糖的分离纯化和抗氧化活性

为实现废弃茶叶资源的再利用以及探究铁观音茶叶末活性多糖的抗氧化活性,以水提醇沉法提取铁观音茶末粗多糖,然后通过DEAE-52纤维素和Sephadex-100葡聚糖凝胶分级两次纯化,并进行纯度鉴定、红外光谱分析、分子量的测定以及体外抗氧化活性的测定等。结果表明,90%的乙醇终浓度得率最高,为1.97%;两次分级纯化后得到TPS-1A和TPS-4C,纯度分别为96.2%、95.1%;红外光谱图谱表明两种多糖均为β-型糖苷键多糖;分子量分别为15792、21722 Da;两种多糖组分抗氧化活性均随着组分浓度的增加而逐渐增强,当质量浓度为1.2 mg/mL时TPS-1A和TPS-4C,对DPPH自由基的清除率分别为95.41%、97.71%,羟自由基清除率分别为93.39%、94.21%,总还原力测得吸光度值为0.699、0.712。由此说明铁观音茶末多糖具有较强的抗氧化活性,且TPS-4C强于TPS-1A。     

茶籽多糖的提纯、理化特征和生物活性研究进展

茶籽多糖是茶籽中一种重要的生物大分子,具有多种生理功能。然而,我国茶籽利用率不高,如能充分利用,必将产生巨大的经济和社会效益。因此,笔者综述了近年来国内外关于茶籽多糖（tea seed polysaccharide,TSPS）提纯方法、理化特征和生物活性的研究,为进一步开发利用茶籽多糖提供科学依据。     

茶枝柑皮多糖的分离纯化及单糖组成分析

采用酸水法从茶枝柑皮中提取多糖,经D-201阴离子交换树脂脱色、Sevag法脱蛋白,透析、冻干后得茶枝柑皮多糖,再用DEAE-Sepharose Fast Flow离子交换柱层析及Sephadex G-100凝胶柱层析分离得到组分CPA-Ⅰ。单糖经1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮(PMP)衍生化后采用高效液相色谱法对多糖组成进行研究,凝胶分子排阻色谱法鉴定其纯度并测定其相对分子质量,紫外、红外光谱法对结构进行初步分析。结果表明：茶枝柑皮多糖CPA-Ⅰ不含蛋白,重均相对分子质量为7.96×104,主要由半乳糖醛酸和阿拉伯糖组成,是羧酸酯化的半乳糖醛酸多聚糖。     

常熟“沙家浜”绿茶多糖的纯化

以"沙家浜"粗绿茶为原料制取茶多糖,并对茶多糖进行脱蛋白和脱色纯化研究。结果表明:聚酰胺吸附柱层析法作为茶多糖纯化(脱蛋白、脱色)的最佳方法,其脱色的适宜工艺条件为,聚酰胺用量为粗多糖质量的6倍,聚酰胺柱用1.5倍柱体积的去离子水以1.5mL/min的流速进行洗脱,在此工艺条件下,蛋白质脱除率达到95.8%。