饲料中添加枯草芽孢杆菌对草鱼消化酶活性和肠道菌群的影响

研究了饲料中添加枯草芽孢杆菌Bacillus subtilis对草鱼Ctenopharyngodon idellus消化道酶活性和肠道菌群数量的影响。选用体质量为(51.37±0.58)g的健康无病草鱼300尾,随机分为对照组和处理组两组,每组设3个重复,每个重复放50尾鱼,对照组饲喂基础日粮,处理组饲喂含枯草芽孢杆菌(108CFU/kg饲料)的基础日粮,日投喂量为鱼体质量的3%,饲养时间为45 d。结果表明:处理组肠道内容物中胰蛋白酶、脂肪酶和淀粉酶活性分别比对照组显著提高14.75%(P<0.01)、13.03%(P<0.01)和78.95%(P<0.01);肝胰脏中脂肪酶和胰蛋白酶活性分别比对照组显著提高17.72%(P<0.01)和13.81%(P<0.01)。肠道菌群数量分析显示,与对照组相比,处理组肠道芽孢杆菌和假单胞菌数量极显著提高(P<0.01),而致病性弧菌和大肠杆菌数量却极显著降低(P<0.01)。研究表明,饲料中添加枯草芽孢杆菌能够改善草鱼肠道菌群组成,并提高消化道特定消化酶活性。     

凝结芽孢杆菌对养殖水质及青虾肠道菌群、非特异性免疫指标和抗病力的影响

为研究凝结芽孢杆菌Bacillus coagulans对养殖水质及青虾Macrobrachium nipponense肠道菌群、血清非特异性免疫指标和抗病力的影响,在养殖水体中分别添加浓度为0、10⁵、105、10⁶、106、10⁷ CFU/mL的凝结芽孢杆菌(分别记为A0、A1、A2、A3组),在室内循环水养殖系统中养殖体质量为(2.50±0.32)g的青虾28 d后,测定青虾肠道菌群数量、血清非特异性免疫指标和抗病力。结果表明:添加凝结芽孢杆菌的各试验组水体氮磷指标总体上低于对照组,且A3组最低;A2组对虾肠道总菌数和双歧杆菌Bifidobacterium数量均显著高于对照组(P<0.05),A2和A3组弧菌Vibrio数量显著低于对照组(P<0.05),各试验组乳酸杆菌Lactobacillus数量较对照组略有所增加(P>0.05);除A1组溶菌酶外,各试验组对虾血清碱性磷酸酶(ALP)、溶菌酶(LZM)和超氧化物歧化酶(SOD)活性均显著高于对照组(P<0.05),而酸性磷酸酶(ACP)活性较对照组略有所提高(P>0.05);经嗜水气单胞菌Aeromonas hydrophila攻毒后,各试验组青虾成活率显著高于对照组(P<0.05),且A3组青虾成活率最高(60%)。研究表明,养殖水体中添加凝结芽孢杆菌可改善养殖水质和青虾肠道菌群数量,提高青虾非特异性免疫力和抗病力,最佳添加浓度为107 CFU/mL的凝结芽孢杆菌(分别记为A0、A1、A2、A3组),在室内循环水养殖系统中养殖体质量为(2.50±0.32)g的青虾28 d后,测定青虾肠道菌群数量、血清非特异性免疫指标和抗病力。结果表明:添加凝结芽孢杆菌的各试验组水体氮磷指标总体上低于对照组,且A3组最低;A2组对虾肠道总菌数和双歧杆菌Bifidobacterium数量均显著高于对照组(P<0.05),A2和A3组弧菌Vibrio数量显著低于对照组(P<0.05),各试验组乳酸杆菌Lactobacillus数量较对照组略有所增加(P>0.05);除A1组溶菌酶外,各试验组对虾血清碱性磷酸酶(ALP)、溶菌酶(LZM)和超氧化物歧化酶(SOD)活性均显著高于对照组(P<0.05),而酸性磷酸酶(ACP)活性较对照组略有所提高(P>0.05);经嗜水气单胞菌Aeromonas hydrophila攻毒后,各试验组青虾成活率显著高于对照组(P<0.05),且A3组青虾成活率最高(60%)。研究表明,养殖水体中添加凝结芽孢杆菌可改善养殖水质和青虾肠道菌群数量,提高青虾非特异性免疫力和抗病力,最佳添加浓度为10⁷ CFU/mL。     

凝结芽孢杆菌对养殖水质及青虾肠道菌群、非特异性免疫指标和抗病力的影响

为研究凝结芽孢杆菌Bacillus coagulans对养殖水质及青虾Macrobrachium nipponense肠道菌群、血清非特异性免疫指标和抗病力的影响,在养殖水体中分别添加浓度为0、10~5、10~6、10~7 CFU/mL的凝结芽孢杆菌(分别记为A0、A1、A2、A3组),在室内循环水养殖系统中养殖体质量为(2.50±0.32)g的青虾28 d后,测定青虾肠道菌群数量、血清非特异性免疫指标和抗病力。结果表明:添加凝结芽孢杆菌的各试验组水体氮磷指标总体上低于对照组,且A3组最低;A2组对虾肠道总菌数和双歧杆菌Bifidobacterium数量均显著高于对照组(P<0.05),A2和A3组弧菌Vibrio数量显著低于对照组(P<0.05),各试验组乳酸杆菌Lactobacillus数量较对照组略有所增加(P>0.05);除A1组溶菌酶外,各试验组对虾血清碱性磷酸酶(ALP)、溶菌酶(LZM)和超氧化物歧化酶(SOD)活性均显著高于对照组(P<0.05),而酸性磷酸酶(ACP)活性较对照组略有所提高(P>0.05);经嗜水气单胞菌Aeromonas hydrophila攻毒后,各试验组青虾成活率显著高于对照组(P<0.05),且A3组青虾成活率最高(60%)。研究表明,养殖水体中添加凝结芽孢杆菌可改善养殖水质和青虾肠道菌群数量,提高青虾非特异性免疫力和抗病力,最佳添加浓度为10~7 CFU/mL。     

β-葡聚糖和乳酸杆菌对鲫协同作用的初步研究

用分别喷有β-葡聚糖、益生菌制剂、β-葡聚糖与益生菌制剂联合以及不添加佐剂的一般饲料分别投喂鲫Carassius auratus,检测各试验组鲫肠道菌群、增重率、饲料系数和成活率。结果表明:与对照组相比,用β-葡聚糖和益生菌制剂联合投喂,鲫肠道中好氧菌总数极显著减少(P<0.01),厌氧菌总数、乳酸杆菌Lactobacillus、双歧杆菌Bifidobact数量显著增加(P<0.05),产气荚膜梭菌Clostridium perfringens数量显著减少(P<0.05);联合制剂中对鲫肠道菌群起调节作用的主要是益生菌,β-葡聚糖能协同益生菌减少鲫肠道的好氧菌,促进益生菌对鲫肠道产气荚膜梭菌的抑制作用;β-葡聚糖和益生菌制剂都能提高鲫对饲料的利用率,促进鲫生长和成活;β-葡聚糖和益生菌制剂联合对鲫的生长和成活的促进作用,比单独使用效果要显著得多。将β-葡聚糖和益生菌制剂配成复合型制剂在水产养殖中具有广阔的应用前景。     

饵料中添加芽孢杆菌BC26对刺参幼参消化酶、免疫反应和抗病力的影响

将浓度为105、107、109CFU/g(饵料)的芽孢杆菌BC26添加到基础饵料中,用每一浓度的饵料投喂一组刺参幼参(1.374 g±0.558 g),对照组投喂基础饵料,每组均设3个平行,试验在12个盛有100 L过滤海水的塑料桶中进行,每桶放50头幼参,饲养试验共进行45 d。试验结束后,分析芽孢杆菌BC26对幼参肠道消化酶活力、免疫反应和抗病力的影响。结果表明:投喂芽孢杆菌BC26饵料的各组幼参肠道中的胰蛋白酶、脂肪酶活力,以及体腔液中的酚氧化酶、总一氧化氮合酶活力均极显著高于对照组(P<0.01);投喂浓度为107、109CFU/g(饵料)的芽孢杆菌BC26组幼参体腔细胞的吞噬活力极显著高于对照组(P<0.01);用病原菌灿烂弧菌NB13攻毒各组幼参,投喂芽孢杆菌BC26组的幼参发病率和死亡率明显低于对照组。研究表明,饵料中添加芽孢杆菌BC26可促进刺参消化和增强免疫功能,并提高其抗病力。     

饲料中添加两种寡糖和一种芽孢杆菌对牙鲆肠道菌群的影响

在饲料中单独或联合添加果寡糖(FOS)、甘露寡糖(MOS)和克劳氏芽孢杆菌Bacillus clausii,共配制8种试验饲料,分别为对照组(不添加寡糖和芽孢杆菌)、5 g/kg FOS(F组)、5 g/kg MOS(M组)、2.5 g/kg FOS+2.5 g/kg MOS(FM组)、107CFU/gB.clausii(B组)、5 g/kg FOS+107CFU/gB.clausii(FB组)、5 g/kg MOS+107CFU/gB.clausii(MB组)和2.5 g/kg FOS+2.5 g/kg MOS+107CFU/gB.clausii(FMB组)。用8种饲料饲喂牙鲆Paralichthys olivaceus56 d后,取牙鲆肠道用2216E琼脂培养基培养肠道细菌,并进行16S rRNA基因测序鉴定。结果表明:从各组牙鲆肠道中共检出细菌11种,其中共有细菌为表皮葡萄球菌Staphylococcus epidermidis、弗尼斯弧菌Vibrio furnissii、鲍氏不动杆菌Acinetobacter bau-mannii、溶酪大球菌Macrococcus caseolyticus、铅黄肠球菌Macrococcus caseolyticus和施氏假单胞菌Pseudo-monas stutzeri;各试验组(除B组外)肠道可培养细菌总数低于对照组,且FMB组最低;各试验组(B组除外)的表皮葡萄球菌、弗尼斯弧菌数、鲍氏不动杆菌和溶酪大球菌数明显低于对照组;F组、M组和FM组肠道优势菌与对照组基本相似,B组、FB组和FMB组的优势菌与对照组差异较大;各试验组的铅黄肠球菌和施氏假单胞菌比例均大幅度高于对照组。在试验饲料中添加FOS、MOS和B.clausii可不同程度地抑制牙鲆肠道病原菌,有利于改善牙鲆肠道健康,且寡糖与B.clausii联合使用表现出一定的协同作用。     

地衣芽孢杆菌和低聚木糖对草鱼生长性能、肠道菌群和消化酶活性的影响

在水温为24³3℃的条件下,选取初始体质量为(71.1±1.4)g的草鱼Ctenopharyngodon idella 300尾,分为试验组和对照组,每组设3个平行。对照组投喂基础饲料,试验组投喂在基础饲料中添加0.1%由地衣芽孢杆菌和低聚木糖配制的合生素,每次投饵量为鱼体质量的3.5%,养殖试验共进行92 d。结果表明:试验组草鱼平均增重率比对照组提高了20.9%(P<0.05),饵料系数比对照组降低了8.9%(P<0.05);试验组草鱼的肠道微生物中,大肠杆菌数量比对照组减少了9.4%(P<0.05),而芽孢杆菌和乳酸杆菌数量则比对照组分别增加了21.6%和7.7%(P<0.05);试验组草鱼的肠道胰蛋白酶、淀粉酶和脂肪酶活性分别比对照组显著提高了18.8%、36.8%和19.8%(P<0.05),肝胰脏中胰蛋白酶和脂肪酶活性分别比对照组显著提高了14.6%和21.3%(P<0.05),而淀粉酶活性则与对照组无明显差异(P>0.05)。     

丁酸梭菌和凝结芽孢杆菌对虹鳟生长性能、肝功能及肠道菌群的影响

为研究饲料中添加丁酸梭菌Clostridium butyricum(CGMCC1.336)、凝结芽孢杆菌Bacillus coagulans(CGMCC1.3220)对虹鳟Oncorhynchus mykiss生长性能、肝功能及肠道菌群的影响,试验设T1、T2、T3 3个益生菌处理组,分别投喂基础饲料中添加丁酸梭菌(7.35×10⁹ CFU/kg)、凝结芽孢杆菌(2.4×109 CFU/kg)、凝结芽孢杆菌(2.4×10⁹ CFU/kg)和丁酸梭菌+凝结芽孢杆菌(7.35×109 CFU/kg)和丁酸梭菌+凝结芽孢杆菌(7.35×10⁹ CFU/kg+2.4×109 CFU/kg+2.4×10⁹ CFU/kg)的试验饲料,对照组(T0)投喂基础饲料,每组设3个重复,每个重复放20尾鱼,将初始体质量为(73.0±2.0)g的虹鳟饲养于水族箱(80 cm×50 cm×60 cm)中,养殖试验共进行40 d。结果表明:饲料中添加丁酸梭菌、凝结芽孢杆菌均能显著提高虹鳟的特定生长率(SGR)(P<0.05),T1和T3组SGR最高,均达1.41%/d,而饲料系数(FCR)则较低,分别为1.08和1.10;T1和T3组虹鳟体成分粗蛋白质含量显著高于对照组(P<0.05),各组粗灰分和水分含量无显著性差异(P>0.05);各益生菌组虹鳟肝脏谷草转氨酶(GOT)、γ-谷氨酰转肽酶(γ-GT)活性、总胆红素(TBiL)含量和肝指数均显著低于对照组(P<0.05),T3组效果最好,而胆碱酯酶(CHE)活性则显著高于对照组(P<0.05),其中T2、T3组效果较好;T3组肠道菌群的Chao1、Simpson、Shannon指数较对照组增加最显著(P<0.05);从肠道菌群结构的门水平上看,T2和T3组变形菌门比例明显降低,而厚壁菌门、拟杆菌门比例则明显提高,T1和T3组梭杆菌门比例明显提高。研究表明,饲料中添加丁酸梭菌、凝结芽孢杆菌可促进虹鳟生长,改善其机体营养成分,维护肝功能,改善肠道菌群结构。     

饲料中添加混合益生菌对幼参生长、消化酶活力和体壁营养组成的影响

为探讨在饲料中添加混合益生菌对刺参Apostichopus japonicus幼参生长、消化酶活力和体壁营养组成的影响,以体质量为(0.54±0.06)g幼参为试验对象,研究了投喂含益生菌(1×105cells/g梅奇酵母C14+1×105cells/g红酵母H26+1×107cells/g芽孢杆菌BC26)饲料(益生菌组)和基础饲料(对照组)后,幼参肠道异养细菌数量和弧菌数量,以及幼参生长、肠道消化酶活力和体壁营养组成的变化。结果表明:在试验第4周和第8周时,益生菌组幼参肠道异养细菌数量显著高于对照组(P<0.05);益生菌组幼参特定生长率和肠道胃蛋白酶、胰蛋白酶、淀粉酶和脂肪酶活力均较对照组显著提高(P<0.05);益生菌组幼参比对照组具有较高的体壁粗蛋白质及糖分含量(P<0.05);投喂含益生菌饲料的幼参肠道弧菌数量显著低于投喂基础饲料的幼参(P<0.05);饲养8周时,益生菌组幼参体壁灰分含量显著低于对照组(P<0.05)。研究表明,饲料中补充混合益生菌可促进幼参生长和消化酶活力,并影响其体壁营养组成。     

饲料中添加混合益生菌对幼参生长、消化酶活力和体壁营养组成的影响

为探讨在饲料中添加混合益生菌对刺参Apostichopus japonicus幼参生长、消化酶活力和体壁营养组成的影响,以体质量为(0.54±0.06)g幼参为试验对象,研究了投喂含益生菌(1×105cells/g梅奇酵母C14+1×105cells/g红酵母H26+1×107cells/g芽孢杆菌BC26)饲料(益生菌组)和基础饲料(对照组)后,幼参肠道异养细菌数量和弧菌数量,以及幼参生长、肠道消化酶活力和体壁营养组成的变化。结果表明:在试验第4周和第8周时,益生菌组幼参肠道异养细菌数量显著高于对照组(P<0.05);益生菌组幼参特定生长率和肠道胃蛋白酶、胰蛋白酶、淀粉酶和脂肪酶活力均较对照组显著提高(P<0.05);益生菌组幼参比对照组具有较高的体壁粗蛋白质及糖分含量(P<0.05);投喂含益生菌饲料的幼参肠道弧菌数量显著低于投喂基础饲料的幼参(P<0.05);饲养8周时,益生菌组幼参体壁灰分含量显著低于对照组(P<0.05)。研究表明,饲料中补充混合益生菌可促进幼参生长和消化酶活力,并影响其体壁营养组成。