利用蔗渣制备低聚木糖的工艺

从蔗渣中提取木聚糖后,采用酶法水解制备低聚木糖.碱法提取工艺为:NaOH浓度4%,料液比1:15(g/mL),30.0℃提取24.0 h;在此条件下,木聚糖产率达20.67%.提取液采用分子量为3000 u的中空纤维超滤膜进行浓缩,浓缩液用清水洗反复超滤除去残余碱,获得浓度为60.17g/L的木聚糖,采用木聚糖酶进行酶解.正交试验结果表明,当酶量5.0 g/L、pH=6.0,在40.O℃下酶解4.0h后,可获得产量达31.13g/L,平均聚合度为2.64的低聚木糖.该技术的优点是:碱液可回收再利用,并可分离碱解液中的阿魏酸和香豆酸.     

棉籽壳低聚木糖分离纯化研究

本文通过高温蒸煮棉籽壳酶法制备低聚木糖,以活性炭柱层析,30%乙醇溶液为洗脱液洗脱,脱色率达到93.8%,制得纯度较高的低聚木糖产品.     

棉籽壳酶法制备低聚木糖工艺条件优化

对棉籽壳酶法生产低聚木糖的工艺参数进行优化。采用响应面法优化了预处理时间、盐酸溶液质量分数和酶解pH值,得到最佳工艺条件为：预处理时间35.70 min、盐酸溶液质量分数0.17%、酶解pH 6.5。在此条件下,木二糖质量浓度达到14.52 g/L,与模型预测值基本相符。且低聚木糖以木二糖为主,木二糖得率为8.13%（以棉籽壳干质量计）。     

碱性H2O2预处理棉籽壳酶法生产低聚木糖的研究

以棉籽壳为原料,研究了碱性H202预处理的影响因素及预处理后酶水解的最适条件.以棉籽壳为原料,碱性H202浓度2.5％,30℃条件下处理时间12～14h,在此条件下预处理得到的棉籽壳木聚糖含量31.7％.利用木聚糖酶降解木聚糖制备低聚木糖,确立了最佳酶解工艺条件为:在固液比1:15的浓度下,加酶量3％,50℃酶解24h时,棉籽壳的木聚糖提取率和水解率为18.3％和57.8％.     

酶解花生壳制备低聚木糖的研究

以花生壳为原料,在固液比1∶20,H_2SO_4浓度为1.0%,120℃条件下处理30min,木聚糖提取率为40.1%。利用木聚糖酶降解木聚糖制备低聚木糖,确立了酶解工艺条件:50℃,pH4.8,加酶量2%(相对固体花生壳原料).搅拌速度80r/min,反应时间24h。在上述反应条件下,低聚木糖得率为81.2%。     

用玉米芯酶法制备低聚木糖

本文报道了制备木聚糖酶所用最经济斜面和最佳碳源。研究探讨了以稀碱液处理玉米芯作原料，用sp.E-86菌株产的木聚糖酶制备低聚木糖。用TLC法测定研究所得的产物是以木糖、木二糖为主的低聚木糖产品。     

超声波预处理棉籽壳酶法制备低聚木糖的工艺研究

本文以棉籽壳为原料制备低聚木糖。以超声温度、超声时间,料液比和Na OH浓度为单因素,采用正交实验设计确定了超声波预处理提取木聚糖的最优条件,即超声温度60℃,超声时间30 min,料液比为1∶15,Na OH浓度为8%,此时木聚糖得率为33.66%。在单因素料液比、加酶量、酶解时间、酶解温度的实验基础上,根据Box-Benhnken中心组合实验设计原理,采用4因素3水平的响应面分析法,以低聚木糖含量为响应值建立数学模型,确定了最佳酶解工艺条件:料液比1∶20,加酶量4%,酶解时间3.5 h,酶解温度64℃,此时低聚木糖含量为3.35 mg/m L。     

超声波预处理棉籽壳酶法制备低聚木糖的工艺研究

本文以棉籽壳为原料制备低聚木糖。以超声温度、超声时间,料液比和Na OH浓度为单因素,采用正交实验设计确定了超声波预处理提取木聚糖的最优条件,即超声温度60℃,超声时间30 min,料液比为1∶15,Na OH浓度为8%,此时木聚糖得率为33.66%。在单因素料液比、加酶量、酶解时间、酶解温度的实验基础上,根据Box-Benhnken中心组合实验设计原理,采用4因素3水平的响应面分析法,以低聚木糖含量为响应值建立数学模型,确定了最佳酶解工艺条件:料液比1∶20,加酶量4%,酶解时间3.5 h,酶解温度64℃,此时低聚木糖含量为3.35 mg/m L。      

超声耦合木聚糖酶水解棉籽壳木聚糖高效制备低聚木糖

本研究以棉籽壳水不溶性粗木聚糖为底物,考察超声耦合酶解棉籽壳木聚糖制备低聚木糖的工艺条件。通过单因素实验以及Box-Behnken响应面实验对低聚木糖的制备工艺进行了优化。实验结果显示,最佳超声耦合酶解条件为时间42 min,温度45℃,反应体系p H=5.1,超声频率40 k Hz,超声强度0.22 W/cm2,还原糖总量达到最高50.46%。经HPLC分析,木二糖的含量占粗棉籽壳木聚糖的29.38%,占还原糖总量58.22%。      

酶法制备玉米芯低聚木糖工艺条件的研究

采用质量分数为10％的NaOH提取玉米芯木聚糖,并对玉米芯木聚糖进行酶法水解,响应面法(RSM法)优化酶解条件.结果表明:玉米芯木聚糖的最佳酶解条件为酶添加量70 U/g、反应时间10 h、玉米芯木聚糖悬浮液质量浓度4 g/(100ml).TLC及HPLC分析表明:酶解液中含有木糖、木二糖、木三糖、木四糖,其中木二糖和木三糖的含量较高.HPLC定量结果表明酶解液中木糖、木二糖和木三糖的含量分别为1.7、3.1和3.6 mg/ml.     

壳聚糖没食子酸衍生物制备及其对鲜切苹果的保鲜作用

为拓宽壳聚糖在鲜切果蔬保鲜方面的应用,该文针对鲜切果蔬腐败特点以及壳聚糖(CTS)和没食子酸(GA)的结构特征,制备出一种新的壳聚糖没食子酸衍生物(CTS-GA),并对其鲜切苹果保鲜效果进行了研究。通过紫外光谱、红外光谱、X射线衍射和HPLC等检测手段对衍生物进行了初步表征,表明新生成的壳聚糖没食子酸衍生物是由没食子酸的羧基与壳聚糖分子上的氨基和羟基反应连接而成。研究了不同处理鲜切苹果在4℃贮藏4 d期间Vc含量、多酚含量、多酚氧化酶(PPO)活性和微生物总数的变化,结果表明贮藏第4 d时,CTS-GA处理组的多酚含量为1.29±0.067 mg/g,显著高于空白处理;Vc含量为(1.36±0.03)×10-2 mg/g,均显著高于空白、CTS处理和GA处理;PPO活性为141.78±4.31 U/g md,显著低于空白和CTS处理;微生物总数大约在5.406±0.012(lg CFU/g),显著低于CTS、GA浸泡处理组以及空白对照组的微生物数量。     

气相色谱-质谱法同时测定腊肠中7种镇静剂类药物残留

本研究建立了同时测定腊肠中地西泮、奥沙西泮、艾司唑仑、阿普唑仑、三唑仑、苯巴比妥、异丙嗪7种镇静剂残留的固相萃取气相色谱-质谱（GC-MS）方法。试样中的镇静剂类药物经氨化乙腈和酸化乙腈提取,用C18固相萃取柱净化,甲醇:丙酮（5: 5,V/V）洗脱,上GC-MS分析。采用毛细管色谱柱DB-5MS（30 m×0.25 mm×0.25 μm）进行分离,电子轰击电离源（EI）,在选择离子扫描（SIM）模式下测定,外标法定量（定量离子分别为256、205、259、279、313、204、72）。实验结果表明,7种镇静剂类药物在一定的含量范围内线性关系良好（分别为0.0488~0.7808 mg/L,0.1039~1.2468 mg/L,0.0971~1.4566 mg/L,0.1006~1.5090 mg/L,0.0975~1.1700 mg/L,0.0605~1.5360 mg/L,0.0454~1.0896 mg/L）,相关系数大于0.997,检出限为0.020~0.082 mg/L,回收率为63.20~88.23%,相对标准偏差（n=5）为7.02~16.89%。结果表明,该方法简便快速、灵敏可靠,适用于肉制品中多种镇静剂类药物残留的检测。     

棉浆不同预处理方法制备纤维素纳晶的研究

分别以未经任何预处理棉浆、PFI磨磨浆预处理棉浆、二甲基亚砜(DMSO)预处理棉浆和质量分数为4%NaOH预处理棉浆为原料,采用酸水解法制备纤维素钠晶(Cellulose Nanocrystal,CNC),并采用扫描电镜(SEM)、X射线衍射图谱(XRD)、红外光谱分析(FTIR)及热重分析(TG)等方法对CNC的性能进行表征和分析。SEM分析表明,前3种方法制备的CNC为棒状粒子,长度为200～400 nm、直径为几十纳米;但NaOH预处理制备的CNC为直径在100 nm左右的球状粒子,且有明显的絮聚现象。XRD分析表明,CNC和棉浆属同一晶型,但CNC结晶度提高。FTIR分析表明,采用以上4种方法制备的CNC和棉浆具有相同官能团。TG分析表明,制备的CNC热稳定性低于棉浆,这一点在采用NaOH预处理制备的CNC上表现更明显,且该方法制备的CNC在600℃时,残留率最大(约40%),具体原因还有待进一步研究。     

芝麻蛋白制备金属螯合肽的酶解工艺研究

分别采用木瓜蛋白酶、胰蛋白酶和碱性蛋白酶Alcalase对芝麻蛋白进行水解,结果表明胰蛋白酶为制备金属螯合肽的最佳酶。通过优化胰蛋白酶酶解工艺条件发现最佳条件为:底物质量浓度5%(g/100mL),酶添加浓度20u/g(底物),水解时间5h,得到的酶解产物金属螯合率最强,与Fe2+的螯合率为90.9%,与Zn2+的螯合率为93.5%。通过考察水解度对酶解产物金属螯合率及抗氧化能力的影响,结果显示水解度在18.9%到22.4%之间的酶解产物金属螯合率强,且水解度在一定范围内金属螯合率和抗氧化能力均与水解度呈正相关性。     

响应面法优化制备南瓜籽抗氧化肽的工艺

以南瓜籽分离蛋白为原料,采用酸性蛋白酶酶解制备南瓜籽抗氧化肽。选用加酶量、酶解温度、pH值、底物质量浓度、酶解时间作为研究对象,以酶解液对DPPH自由基的清除率为评价指标,在单因素试验的基础上,运用Plackett-Burman筛选试验确定显著因素,然后通过三因素三水平的Box-Behnken响应面分析法优化制备南瓜籽抗氧化肽的酶解工艺条件。结果表明：酸性蛋白酶酶解南瓜籽蛋白质的最佳工艺条件为：酶解温度50℃、pH2.5、酶解时间5h、底物质量浓度0.05g/mL、加酶量6000U/g pro,在此条件下,DPPH自由基清除率可达到92.82%。     

桑叶蛋白抗氧化肽的酶法制备

为了提高桑叶蛋白MLP的抗氧化活性,用碱性蛋白酶Alcalase、复合蛋白酶Protamex、木瓜蛋白酶Papain、风味蛋白酶Flavourzyme、中性蛋白酶Neutrase及胰蛋白酶Trypsin等6种蛋白酶对MLP进行单酶酶解及双酶、三酶复合酶解,并对酶解前后的化学组成、分子量分布、多肽得率、氨基酸组成、自由基清除能力、还原能力等进行对比分析。结果表明,MLP主要由分子量大于6.5 ku的大分子肽及蛋白质组成,酶解物则主要由分子量为0.3~0.6 ku的小肽及0.6~6.5 ku的多肽组成;相较于过度酶解,适度酶解能更好的改善MLP的抗氧化活性;多肽得率与自由基清除能力显著正相关(r=0.916~0.985);6种蛋白酶中,碱性蛋白酶、中性蛋白酶及复合蛋白酶的酶解物抗氧化活性显著优于MLP及其他三种蛋白酶解物;中性蛋白酶单独酶解物的抗氧化活性显著优于双酶、三酶复合酶解物。对中性蛋白酶的单酶酶解条件进行优化,结果表明底物浓度为20 mg/mL,E/S为1%(W/W),用中性蛋白酶酶解2 h所得的酶解物(NH)的抗氧化活性最高,后期研究中可选用中性蛋白酶制备桑叶蛋白抗氧化肽。NH或许可以作为食品中较有潜力的抗氧化剂。     

酶法生产大豆蛋白ACE抑制肽的研究

研究了Alcalase碱性蛋白酶、Neutrase中性蛋白酶、Protames复合蛋白酶、Flavourzyme风味蛋白酶对大豆分离蛋白的水解效果和ACE(血管紧张素转化酶)的抑制活性。水解能力用pH-start法检测,水解度大小依次为:Alcalase碱性蛋白酶>Protames复合蛋白酶>Neutrase中性蛋白酶>Flavourzyme风味蛋白酶;ACE抑制活性用高效液相法检测,ACE抑制率强弱依次为:Alcalase碱性蛋白酶>Flavourzyme风味蛋白酶>Protames复合蛋白酶>Neutrase中性蛋白酶。综合考虑,选定Alcalase碱性蛋白酶为生产大豆ACE抑制肽的最适酶,并对其酶解条件进行了优化,确定生产大豆ACE抑制肽的最佳条件为:温度60℃、pH8.0、[S]=4%、[E]/[S]=4%,这时的水解度为14.4%。     

玉米蛋白环（组氨酸-脯氨酸）二肽前体的制备及其鉴定

以玉米蛋白为原料,制备活性环（组氨酸-脯氨酸）二肽（cyclo（His-Pro））前体——His-Pro和Pro-His二肽。分别采用碱性蛋白酶、复合蛋白酶、风味蛋白酶和木瓜蛋白酶对提取的玉米γ-醇溶蛋白进行单酶和双酶分步水解,筛选出最佳酶解工艺。采用碱性蛋白酶和风味蛋白酶分步水解的水解产物中cyclo（His-Pro）前体的含量比其他水解产物要高。采用响应面和L16（45）正交试验对碱性蛋白酶和风味蛋白酶分步水解γ-醇溶蛋白的工艺进行了优化,最佳水解条件为：底物质量浓度32 mg/mL,先加入12 100 U/g的碱性蛋白酶水解6.5 h,再加入17 000 U/g的风味蛋白酶于pH 7.5、55 ℃条件下水解6 h。采用超高效液相色谱法和电喷雾质谱法对cyclo（His-Pro）前体进行定量和定性分析,结果表明水解产物中含有较高含量的脯氨酸-组氨酸二肽（6.88 mg/g）。     

A Novel Process for the Recovery of Polyphenols from Grape (Vitis vinifera L.) Pomace

ABSTRACT: A novel process for enzyme-assisted extraction of polyphenols from winery by-products was established on a pilot-plant scale. Optimization of enzymatic hydrolysis of grape skins, that is, selection of pectinolytic and cellulolytic enzymes, enzyme-substrate ratio, and time-temperature regime of enzymatic treatment, was conducted on a laboratory scale. Enzyme activities were monitored by viscosity measurement of resuspended grape pomace and by quantification of oligomeric pectin and cellulose degradation products released from cell wall material. Optimal conditions were obtained with 5000 ppm (based on dry matter) of a pectinolytic and 2500 ppm of a cellulolytic enzyme preparation, respectively, at 50°C, which were also applied in pilot-plant scale experiments. Concomitant determination of individual polyphenolics demonstrated a significantly improved yield for most compounds when compared with experiments without enzyme addition. Recovery rates were comparable to those obtained when grape pomace was extracted using sulfite. Pre-extraction of the pomace with hot water followed by treatment with cell wall degrading enzymes even increased yields of phenolic compounds. Only some quercetin glycosides and malvidin coumaroylglucoside were partly hydrolyzed due to enzyme side activities. This new process may provide a valuable alternative to the application of sulfite, which is considered crucial in food processing.