灵芝液体培养菌株的选择及其发酵条件优化

在适于液体培养的灵芝菌株中,经选择试验确定赤芝G22为液体发酵生产多糖的高产菌株,并对赤芝G22菌株的液体发酵条件进行了选择优化.结果表明,实现多糖高产的发酵工艺条件为:发酵温度28 ℃、摇床转速180 r/min、培养基初始pH值6.0、发酵时间144 h.采用此优化的工艺条件进行液体发酵,使灵芝多糖产量由1.823 g/L提高到2.315 g/L,提高了26.98 %.     

灵芝液体培养菌株的选择及其发酵条件研究

在适于液体培养的灵芝菌株中,经选择试验确定赤芝G22为液体发酵生产多糖的高产菌株。采用单因素和正交试验对赤芝G22菌株的液体发酵条件进行了选择优化。结果表明,实现多糖高产的最佳发酵工艺条件为：发酵温度27℃、摇床转速170r/min、培养基初始pH值6.0、发酵时间144h。采用此优化的工艺条件进行液体发酵,使灵芝多糖产量由1.823g/L提高到2.412g/L,提高了31.0%。     

灵芝发酵芹菜渣条件优化研究

目的获取富含膳食纤维的全营养芹菜汁饮品。方法芹菜渣为芹菜榨汁的副产物,含有芹菜中几乎全部的膳食纤维,利用灵芝发酵产生富含可溶性膳食纤维的发酵液,并对影响其发酵的因素进行初步探索。结果水:芹菜渣为260%(v/w),初始pH5.0,黄豆饼粉1.5%,FeSO4.7H2O 0.008%适于芹菜渣的发酵,发酵产物中可溶性膳食纤维含量可达30.76g/L以上,固形物40.23g/L以上,pH5.0左右,适合与芹菜汁勾兑。结论灵芝发酵芹菜渣所得发酵产品可以弥补芹菜汁中膳食纤维的不足,可获得全营养芹菜汁产品。     

不同灵芝菌种液体发酵条件研究

用液体摇瓶法对6个灵芝品种进行单因素试验,探索其发酵条件,结果表明:大盖G9、泰山仙芝、灵芝444在培养基Ⅰ中80r/min、28℃培养其菌丝体干重量达到最大,分别为0.7635g/100mL、1.0124g/1000mL、0.5635g/100mL;灵芝44在培养基Ⅰ中120 r/min、24℃培养菌丝体干重量最大为0.5197g/10mL:灵芝265在培养基Ⅰ中160 r/min、28℃培养菌丝体干重量最大为0.9954g/100mL;而灵芝267在培养基Ⅳ中160 r/min、32℃培养菌丝体干重量最大为0.9302 g/100mL;且胞外多糖的最大产生量的条件与菌丝体最高得率的条件不同.     

灵芝多糖液体发酵条件的优化和pH控制策略的研究

以韩国灵芝为发酵菌种,以灵芝多糖、菌丝干重为指标,研究了非营养因子对灵芝发酵的影响。通过单因素实验确立了摇瓶培养灵芝的最佳pH为6.0、装液量100mL/250mL、接种量10%和培养时间5d。在10L发酵罐中,恒定pH为4.19比恒定pH为5.0和分段控制pH为5.0和4.19灵芝多糖产量更高,达1.64g/L,菌丝干重为7.13g/L。     

灵芝多糖液体发酵条件的优化和pH控制策略的研究

以韩国灵芝为发酵菌种,以灵芝多糖、菌丝干重为指标,研究了非营养因子对灵芝发酵的影响。通过单因素实验确立了摇瓶培养灵芝的最佳pH为6.0、装液量100mL/250mL、接种量10%和培养时间5d。在10L发酵罐中,恒定pH为4.19比恒定pH为5.0和分段控制pH为5.0和4.19灵芝多糖产量更高,达1.64g/L,菌丝干重为7.13g/L。      

灵芝液体发酵富集硒元素研究

研究了灵芝在亚硒酸钠水平分别为50μg/mL、100μg/mL、150μg/mL、200μg/mL、250μg/mL、300μg/mL、350μg/mL、400μg/mL的固体PDA培养基上的生长情况,30℃恒温培养6d,观察并测定菌落直径;在不同亚硒酸钠浓度条件下进行液体发酵,180r/min转速下30℃摇床培养5d,检测发酵液生物量、富硒率,同时检测富硒后菌丝体部分金属元素的含量变化。结果表明:150μg/mL~250μg/mL的含硒固体PDA培养基上菌丝体生长好,在含硒250μg/mL液体发酵培养基上菌丝体生物量最高为0.86g,300μg/mL发酵液中富硒率最高为47.71%,而且富硒后的菌丝体其他金属元素含量变化不明显。     

灵芝液体发酵工艺优化研究

以煮熟土豆汁等为原料,灵芝赤芝GS为出发菌株进行液态发酵,对工艺条件进行研究,得出最优参数:接种量8%～10%、培养温度(28±1)℃、培养pH4.5～5.0、发酵周期98～110h、通风比1:(0.25～0.35)时,发酵液菌球比可以达到96%以上,灵芝多糖可以达到50mg/g以上。     

灵芝菌丝体液体深层发酵研究进展

灵芝是我国著名药用真菌,其中的多糖和三萜是有效的抗肿瘤物质,但由于野生灵芝很少,种植灵芝周期长,占地广,受季节影响,难以产业化生产,因而价格昂贵.为了使更多人受惠,利用液体深层培养发酵灵芝菌丝体是目前的重要发展方向.本文将对灵芝菌丝体液体深层发酵进行综述,并作出展望.     

灵芝液体深层发酵技术

文章阐述了深层发酵法生产灵芝的工艺流程、生产菌种的选育，以及培养基的组成和发酵工艺条件的优化。     

茯苓液体发酵条件研究及保健饮料研制

对茯苓液体发酵的碳源、氮源,pH值及发酵时间等进行研究,结果表明,最佳碳源是葡萄糖与蔗糖,氮源为麸皮,碳源浓度为8%,pH为5.0,发酵时间为5d.将发酵后的菌丝发酵液经过处理生产茯苓保健饮料.通过正交实验,确定了茯苓保健饮料的最佳配方为：茯苓发酵原液为6.7%,白糖7%,柠檬酸0.02%.并对成品进行了卫生微生物指标检测.     

玉米水解糖液体培养灵芝发酵条件的研究

以灵芝多糖为指标，采用摇瓶液体发酵的方法，研究了以玉米水解糖为主要原料，液体培养灵芝的发酵条件。结果表明，实现多糖高产的发酵条件为：发酵温度28℃、摇床转速180r／min、培养基初始pH值6．0、发酵时间144h。采用此优化的条件进行液体发酵，使灵芝多糖产量由1．823g／L提高到2．315g／L，提高了26．98％。     

红曲椰果液态发酵工艺条件的优化

对红曲椰果液态发酵条件进行了研究，结果表明，产莫纳可林K的最佳条件为：马铃薯15％、葡萄糖5％、NaNO3 0.2％、MgSO4 0.1％、ZnSO4 0．1％、pH为6．0、于26℃发酵13d，得到莫纳可林K为152，00mg／L，色价为128．38μ/g干红曲椰果的红曲椰果。     

纳豆激酶高活性菌株的筛选及其液体发酵条件的优化

从纳豆样品中分离筛选到一株产纳豆激酶的细菌，编号为BN-6．通过单因素实验和正交实验确定了液体发酵纳豆激酶的最佳条件：大豆蛋白胨1％、蔗糖2％、培养温度35℃，初始pH=8.0，培养时间24h．在最佳条件下。该菌产酶纤溶活力超过1000尿激酶单位／毫升发酵液。     

黑曲霉2277菌株产纤维素酶最佳液体发酵条件的研究

对黑曲霉2277菌株产纤维素酶最佳液体培养条件进行了研究。结果表明,黑曲霉2277最适液体培养条件为:稻草粉(碳源)6%,豆饼粉(氮源)1%,初始pH6.0～6.5,培养温度28℃～30℃,一级培养时间120h,二级培养时间76h～84h,接种量10%,250mL三角瓶装液量75mL,摇床转速150r/min。在最适培养条件下,以DNS法对酶活进行定量分析,测得发酵液中CMC酶活达92.1μg/mL·min;以滤纸崩溃度对酶活进行定性分析,滤纸在94h内完全分解。     

酒精制醋连续发酵工艺研究

介绍2L气升式反应器二级串连连续发酵生产食醋的工艺。为确定最初发酵条件，试验先用两个2L气升式反应器以6．3％食用酒精、4％黄浆水和水的混合物为发酵培养基在温度30℃条件下半连续发酵，充满系数0．77。当酸度达到要求时都改为连续发酵，同时对进料流量、通气速率进行了研究。得出在进料流量55mL／h、入口处食用酒精6．5％、黄浆水4．3％、通气速率0.188min^-1（vvm）、残留酒精浓度0．35g／100mL时酸度为4．87g／100mL、产酸速率为0．87g/L·h，产酸率76．6％（g/g）。     

固态发酵灵芝多糖营养保健口服液的研制

以大豆粕为主要培养基，固态发酵灵芝多糖后，利用含有灵芝菌丝体的培养基，进行了营养保健灵芝多糖口服液的研制，研究了灵芝多糖营养保健口服液加工生产的关键技术要点。     

红曲霉固态发酵产生红曲色素工艺研究

研究了以红曲霉为菌种，固体发酵法生产红曲色素的工艺。从产色素效果和原料的成本来考虑，选用大米做碳源。在发酵过程中添加氮源有利于色价的提高。红曲固态发酵最佳条件是接种量6％，米饭初始水分38％，发酵温度32-35℃，全过程发酵10d。     

灵芝肽对脂质氧化的抑制作用研究

研究了灵芝肽在脂质体系中的抗氧化活性。结果表明：灵芝肽在豆油厦猪油体系中均具有良好的抗氧化活性，在豆油体系中其抗氧化性能优于BHT；并可有效地抑制脂肪氧合酶的活力，灵芝肽的半有效浓度IC50为16．9μg／mL。     

ROLE OF WORT AERATION IN THE BREWING PROCESS PART 2: THE OPTIMAL AERATION CONDITIONS FOR THE BREWING PROCESS

Fermenting and growing activities of early yeast (yeast at the early stage of fermentation) were elevated by wort aeration, reaching their maximal level after 5 h of aeration. The lipid content of early yeast was also elevated by wort aeration, and reached a maximal level after 9 h of aeration. While certain amounts of lipid are necessary for the budding of yeast, the excess amounts of lipid synthesised between 5–9 h of aeration were not sufficient for one further budding, and so accumulated in the final yeast. It is better to set the optimal aeration conditions on the lipid content of early yeast, rather than the amount of wort aeration.