小米糠水溶性非淀粉多糖抗氧化活性研究

为了合理开发利用小米糠资源,提取小米糠中水溶性非淀粉多糖(SNSP),分析了SNSP的相对分子质量和单糖组成,测定了其中总酚与黄酮含量,并以对DPPH·、O_2~-·、ABTS~+·、·OH清除能力以及Fe~(2+)螯合能力和Fe~(3+)还原能力为指标,研究了小米糠及SNSP的抗氧化活性。结果表明,SNSP的重均相对分子质量为1.930×10~6g/mol,主要单糖为葡萄糖;SNSP中总酚与黄酮含量分别为426.12μgGAE/g与64.19μgRE/g;与小米糠相比,SNSP具有较强的抗氧化活性,尤其是对·OH、O_2~(-·)的清除能力以及Fe~(3+)还原能力和Fe~(2+)螯合能力(P0.05)。     

百合中水溶性非淀粉多糖的提取、分离和纯化

研究使用或未使用蛋白酶从百合鳞茎中提取和分离水溶性非淀粉多糖(WSNSP)。利用SepharsoseCL-6B和SephadexG-100凝胶过滤色谱分离了用蛋白酶提取的WSNSP,测定WSNSP的比浓粘度为89.168cm3/g,相对分子质量较低为21448.8。此外,还利用离子交换和凝胶过滤色谱纯化了未使用蛋白酶提取的WSNSP,发现一些多糖与蛋白质结合在一起,即糖蛋白。     

多糖提取与纯化技术应用进展

多糖由于它们独特的功能和低毒性，在保健食品和药品发展方面具有广阔的应用前景。提取和纯化是制备多糖的关键。目前用的提取方法有：常规水提法、超声波、微波辅助提取、超临界流体萃取；分离纯化技术有：色谱、膜分离。综述了多糖制备常用的提取与纯化工艺与新技术的应用进展，分析了它们的原理及优缺点并探讨了发展前景。     

超声波辅助提取水溶性大豆多糖及纯化工艺

以脱脂挤压豆渣为原料,对超声波辅助提取水溶性大豆多糖及纯化工艺进行研究。通过单因素试验和正交试验,确定最佳工艺参数为提取pH4.5、热水温度90℃、液料比20:1(mL/g)、超声波功率200W、超声波提取时间40min时,水溶性大豆多糖的得率为8.82%。纯化粗多糖的条件为Sevag试剂中氯仿与正丁醇体积比3:1、萃取3次,所得纯化多糖的回收率为60.30%。     

水溶性大豆多糖的提取工艺研究

以脱脂豆粕为材料,对豆粕中水溶性大豆多糖的提取、纯化进行研究。通过酶提取效果选择,在木瓜蛋白酶、碱性蛋白酶、复合蛋白酶3 种酶中选取提取效果最佳的碱性蛋白酶;通过从提取溶液的pH 值、提取时间、料液比、酶的添加量及提取温度等因素的试验分析比较,得出大豆多糖的最优提取条件。结果表明：当提取溶液pH 值、提取温度、提取时间和液料比分别为6.0、50℃、1.5h 和20:1(mL/g)时,豆渣中大豆多糖的提取率可达到最大值17.92%,粗多糖的纯度为86.32%。     

燕麦麸非淀粉多糖提取工艺的研究

采用酶-水溶液和碱溶液提取法进行了燕麦麸非淀粉多糖提取工艺研究。通过正交试验得到燕麦麸水溶性非淀粉多糖（S-NSP）和水不溶性非淀粉多糖（I-NSP）的优化工艺参数,在此条件下S-NSP的得率9．12％,提取率81．5％;I-NSP的得率10．91％,提取率94．6％。     

燕麦麸非淀粉多糖提取工艺的研究

采用酶-水溶液和碱溶液提取法进行了燕麦麸非淀粉多糖提取工艺研究.通过正交试验得到燕麦麸水溶性非淀粉多糖(S-NSP)和水不溶性非淀粉多糖(I-NSP)的优化工艺参数,在此条件下S-NSP的得率9.12%,提取率81.5%;I-NSP的得率10.91%,提取率94.6%.     

百合中水溶性非淀粉多糖的分离与纯化

百合中水溶性非淀粉多糖的提取、分离和纯化方法的研究表明 ,糊化淀粉经α 淀粉酶和普鲁兰酶水解除去后 ,剩余多糖经SepharoseCL 6B与SephedexG 10 0凝胶过滤色谱分离 ,得到比浓粘度为 81.2 92cm3/ g的水溶性非淀粉多糖 ,其相对分子质量较小 (2 0 0 18.6 ) .研究中还发现一些多糖与蛋白质以结合形式糖蛋白存在 .     

火棘水溶性多糖的提取及分离纯化

本文对火棘水溶性多糖的提取工艺、分离纯化以及纯度鉴定作了研究。结果表明：火棘多糖的最佳提取工艺为90℃、9h、料液比为1：10，火棘多糖的提取率约为3．5％；通过分级沉淀、DE-52柱层析分离得到PP-A2、PP-A3、PP-A4和PP-B1、PP-B2、PP-B3六种组分；经Sephadex G-200柱层析鉴定，PP-A2、PP-A3、PP-B2为均一多糖。     

鹰嘴豆非淀粉多糖的分离纯化及结构表征

提取鹰嘴豆中的粗多糖,通过酶处理和Sevag法除去多糖中的淀粉和蛋白质,经DEAE-52纤维素柱和Sephadex G-75凝胶柱分离纯化分别得到鹰嘴豆非淀粉中性多糖和酸性多糖,并通过紫外光谱、气相色谱、红外光谱、扫描电镜测定其性质和单糖组成。结果表明：鹰嘴豆非淀粉多糖在260 nm和280 nm波长处均无吸收峰,表明两种多糖均不含核酸、蛋白质以及肽类等;气相色谱测定表明鹰嘴豆非淀粉中性多糖单糖组成的物质的量比为鼠李糖∶岩藻糖∶阿拉伯糖∶木糖∶甘露糖∶半乳糖∶葡萄糖=2.48∶1∶3.92∶0.87∶32.82∶18.79∶28.06,鹰嘴豆非淀粉酸性多糖单糖组成物质的量比为鼠李糖∶岩藻糖∶阿拉伯糖∶木糖∶甘露糖∶半乳糖∶葡萄糖=2.22∶1∶3.92∶2.10∶5.92∶15.99∶8.57（均以岩藻糖为标准）;红外光谱测定表明二者均有多糖的特征吸收峰;扫描电镜显示鹰嘴豆非淀粉中性多糖呈线形结构而鹰嘴豆非淀粉酸性多糖呈卷曲的片状结构。     

羊栖菜多糖的提取及纯化

目的:分离纯化羊栖菜多糖。方法:采用水煮醇沉法、酸煮醇沉法及乙醇脱脂后水煮醇沉三种方法提取羊栖菜粗多糖。利用Sevag法结合胰酶消化去蛋白,SephadexG200分离纯化多糖。结果:三种方法提取获得粗多糖含量分别为:24.35%、23.87%和17.87%。分子筛层析分离得到两个在A620和A280重合的组分,其硫酸根的含量分别为8.95%和3.92%。结论:从羊栖菜粗多糖分离得到两个含有硫酸基的蛋白聚糖。     

沙田柚皮水溶性多糖的提取和测定

柚皮细颗粒样品经石油醚回流脱脂、热水提取,以葡萄糖为参照品,利用分光光度法测定沙田柚皮中水溶性多糖的含量。葡萄糖浓度在15.0～100.0μg/ml范围内与吸光度有良好的线性关系,回归方程为:A=0.00755X+0.07475(r=0.9992),测出柚皮中水溶性多糖含量是7.28%,精密度为0.82%(n=3);对照实验的回收率为99.00%±1.15%,精密度为0.59%(n=5)。此法操作简便,结果稳定可靠,是柚皮及其果肉中水溶性多糖含量测定的有效方法。     

荔枝肉水溶性多糖提取工艺优化

目的：以荔枝肉为原料,采用水溶剂提取技术从荔枝肉中提取水溶性多糖。方法：在单因素试验基础上,通过响应面试验分析方法优化水溶剂提取荔枝肉水溶性多糖的最佳工艺参数,并对多糖含量进行测定。结果：水溶剂提取的最佳工艺参数为荔枝肉与水的比例1:17(g/mL)、提取温度90.5℃、提取时间4.0h。此时的响应值即提取率达到10.06%。提取所得的粗多糖,用苯酚-硫酸法对其含量进行测定,结果多糖平均含量为6.71%。结论：响应面法优化荔枝肉多糖提取工艺参数是可行的。     

香薷多糖的提取与纯化研究

利用热水浸提、乙醇醇沉提取水溶性香薷粗多糖,脱蛋白、除色素后所得的精制多糖经DEAE-52 纤维素阴离子交换色谱得两个组分Ⅰ和Ⅱ。主要组分Ⅱ经Sephacryl S-300 葡聚糖凝胶色谱进一步纯化,得单一多糖组分,命名为HMP Ⅱ。经高效凝胶渗透色谱检测其纯度为93.55%。     

芦笋多糖提取纯化工艺及其体外抗氧化研究

目的：探讨芦笋多糖的提取纯化方法及其体外抗氧化活性。方法：采用L9(34)正交试验设计,考察提取温度、提取时间、料液比、提取次数等因素对芦笋粗多糖浸提效果的影响。进一步以酶法除蛋白纯化粗多糖,探索3种蛋白酶作用的最佳工艺条件及其除蛋白效果,用硫酸-苯酚法和DNS法定量分析粗多糖;并研究芦笋多糖对自由基的清除作用以及对红细胞溶血、肝线粒体肿大的抑制作用。结果：在提取温度100℃、提取时间3h、料液比1:20(g/mL),提取1次条件下,芦笋粗多糖的得率最高,为(8.50±1.07)%,经碱性蛋白酶纯化后,纯度可达(52.40±0.47)%。芦笋多糖在体外体系中可显著清除DPPH自由基、 ·OH、O2－ ·,并具有抑制红细胞溶血,抑制肝线粒体肿大的作用。结论：芦笋多糖具有较好的抗氧化活性。     

石仙桃多糖的提取工艺及纯化研究

采用单因素试验和L9(34)正交试验设计,研究了料液比、提取时间、提取温度对石仙桃多糖提取率的影响,筛选出了最佳提取工艺。采用盐析法除蛋白、乙醇反复沉淀的方法纯化石仙桃多糖。结果表明,影响多糖提取率的主次因素为提取时间、料液比及提取温度; 石仙桃多糖最佳提取工艺条件为：提取温度80℃,浸提时间5h,料液比1:40。在此工艺条件下, 石仙桃多糖的得率为2.25%。纯化后的多糖经纯度鉴定为均多糖。     

巴戟天多糖的提取及纯化研究

采用纤维素酶水解方法提取巴戟天粗多糖,并通过离子交换和凝胶过滤层析对得到的粗多糖进行了分离纯化。正交试验得到最佳的酶处理条件为：纤维素酶用量8mg／g、pH5．0、水解温度40℃以及水解时间2h。采用阶段梯度洗脱方式,巴戟天多糖在DEAE-SephroseCL．6B柱上被分为三个组分：MOPI-1、MOPI-2和MOPI-3。将离子交换层析得到的MOPI-2和MOPI-3组分进行SephadexG-50凝胶过滤层析,由MOPI-3可得到均一组分MOPI-3a,而MOPI-2被分为MOPI-2a和MOPI-2b两个组分。