甲型副伤寒细菌单克隆抗体的制备及其初步应用

目的制备甲型副伤寒特异性多糖(O-specific polysaccharide,O-SP)单克隆抗体,建立鉴定甲型副伤寒沙门血清型细菌的全菌体ELISA和O-SP的竞争ELISA定量检测方法。方法用甲型副伤寒全菌体免疫小鼠,通过常规方法融合,以破伤风类毒素(tetanus toxoid,TT)为载体偶联的O-SP为筛选检测抗原,间接ELISA法筛选分泌抗甲型副伤寒O-SP的特异性抗体杂交瘤细胞株;分别以甲型和乙型副伤寒的O-SP-TT及伤寒Vi-TT为包被抗原,检测制备的单克隆抗体与不同血清型细菌多糖的交叉反应;以不同沙门菌菌体为包被抗原,用制备的1株甲型副伤寒O-SP特异性单克隆抗体进行菌体间接ELISA,检测细菌血清型;用该株单克隆抗体为竞争抗体,建立定量检测样品中O-SP的竞争ELISA方法。结果筛选出6株分泌抗甲型副伤寒O-SP抗体的杂交瘤阳性细胞株;其中2株仅与甲型副伤寒O-SP呈特异性反应,其余4株与乙型副伤寒O-SP呈交叉反应;用其中1株单克隆抗体进行的菌体间接ELISA显示,该株单克隆抗体仅与甲型副伤寒沙门菌反应,而不与伤寒沙门菌、乙型副伤寒沙门菌和肠炎沙门菌反应;竞争ELISA定量检测O-SP的检测范围在0.4~0.003 2μg/ml最准确。结论制备的特异性抗甲型副伤寒O-SP的单克隆抗体可用于甲型副伤寒细菌血清型快速鉴定和O-SP的竞争ELISA定量检测。     

重组戊型肝炎p179疫苗小鼠抗体间接ELISA检测方法的建立及其初步应用

目的建立重组戊型肝炎p179疫苗抗体间接ELISA检测方法,并进行初步应用。方法确定重组戊型肝炎疫苗p179抗原的最佳包被浓度及包被条件、酶标抗体的最佳稀释度、封闭条件、最佳抗体稀释液,对建立的方法的特异性、准确性及精密度进行验证,并与市售ELISA试剂盒进行比较。结果抗原最佳包被浓度为1μg/ml,4℃包被过夜;酶标抗体最佳稀释度为1∶5 000;3%牛血清白蛋白封闭3 h;最佳抗体稀释液为含1%酪蛋白PBS。建立的方法检测的A450与重组戊肝抗原浓度呈明显的剂量依赖性,对不相关的anti-HAV、anti-HB、anti-INF、anti-RABV无交叉反应;36份小鼠阳性血清的检出率为100%;3份阳性血清重复检测20次的CV均小于15%。市售某厂家ELISA试剂盒检测48份血清,阳性检出率为83.3%,建立的间接ELISA方法检测,阳性检出率为89.6%。结论建立了重组戊肝p179疫苗抗体间接ELISA检测方法,可用于重组戊肝疫苗小鼠免疫后血清抗体的检测。     

汉坦病毒半微量直接免疫酶斑减少中和试验方法的建立及其应用

采用辣根过氧化物酶标记兔抗－HTNVIgG（HRP－抗－HTNV）染色的半微量直接免疫酶斑减少中和试验,作为检测灭活汉坦病毒疫苗和病毒中和抗体及血清学分型的方法。该方法简便、特异、敏感、稳定,结果与经典的空斑减少中和试验比较差异无显著意义（P＞0．05）,HRP－抗－HTNV可识别HTNV和SEOV的共同抗原。灭活HTNV疫苗加强免疫和部分批次初次免疫诱导较好的交叉中和抗体应答,同型与异型中和抗体滴度呈正的直线相关。     

流感减毒活疫苗诱发黏膜IgA抗体间接ELISA检测方法的优化及其实验室内控品的制备

目的优化流感减毒活疫苗诱发黏膜IgA抗体的ELISA检测方法,并制备IgA抗体实验室内控品。方法采用ELISA检测法对流感病毒抗原(全病毒及其相应HA抗原)及包被浓度(0. 5、1、2、4μg/mL)、封闭液(1%BSA、10%FBS、5%脱脂奶粉)及封闭时间(1、1. 5、2 h)、样本稀释液(含1%BSA的PBST、含2%脱脂奶粉的PBST、样本保存液)及样本作用时间(45、60、75 min)、酶标抗体稀释度(1∶1 000、1∶2 000、1∶4 000、1∶8 000)进行优化。采用优化的方法制备针对H1N1、H3N2和B型3个型别流感病毒的IgA抗体检测用实验内控品,并用该方法对接种三价流感减毒活疫苗的20名志愿者的鼻咽拭子样本进行检测。结果最适间接ELISA法检测条件为:以全病毒作为包被抗原,包被浓度为1μg/mL;以含1%牛血清白蛋白为封闭液封闭2 h;样本稀释液为2%脱脂奶粉的PBST,作用时间为60 min;酶标抗体稀释度为1∶1 000。采用优化方法制备的H1N1、H3N2、B型IgA抗体阳性实验室内控品几何平均滴度分别为23、45、35,可接受范围分别为16～32、32～64、32～64。接种疫苗后20名志愿者中3种型别IgA抗体滴度较接种前均显著增高(P 0. 001),40%～50%志愿者接种后IgA抗体滴度比接种前至少升高2倍。结论成功优化了流感减毒活疫苗诱发黏膜IgA抗体的ELISA检测方法,制备的IgA抗体的实验室内控品可用于流感减毒活疫苗接种后鼻咽拭子抗体的检测。     

禽流感病毒核蛋白基因的克隆及在大肠杆菌中的表达

目的　以 1株H5N1 亚型禽流感病毒RNA为模板扩增NP全基因cDNA ,并在大肠杆菌中进行表达。方法　提取禽流感病毒RNA ,以RT PCR法扩增编码NP基因cDNA并测序 ,将其克隆到pET 2 8a原核表达载体 ,并在大肠杆菌BL2 1(DE3)plysS中表达 ,用SDS PAGE和Westernblot检测表达产物。结果　所克隆的核苷酸片段包含了核蛋白基因完整阅读框架 ,编码 4 98个氨基酸 ,构建的重组表达载体在大肠杆菌BL2 1(DE3)plysS中表达出相对分子质量约为 5 5 0 0 0的重组蛋白 ,该重组蛋白具有良好的免疫原性。结论　已成功克隆和表达了禽流感病毒核蛋白基因 ,为禽流感新型免疫学诊断试剂的研制奠定了基础     

医药废水中大肠杆菌抗体制备及检测方法

该文研究制备了大肠杆菌全菌体抗体,经纯化后抗体蛋白含量为2.50 mg/mL,测得全菌体抗体的效价大于25 600,并使用自制的抗体,建立了测定医药废水中大肠杆菌的间接酶联免疫吸附（ELISA）方法。间接ELISA方法的最佳测定条件为：抗原最佳包被浓度为200倍,一抗和酶标二抗的稀释浓度分别为稀释12 800倍和2 000倍,以0.5%牛血清白蛋白（BSA）作为封闭液,封闭时间为2 h。在最佳测定条件下,大肠杆菌在1×10^3-1×10^9 cfu/mL表现出良好的线性关系。采用所建立的间接ELISA方法检测了实际医药废水中的大肠杆菌,检测限为10^3 cfu/mL。     

包被伤寒Vi多糖抗原检测鼠血清中伤寒沙门菌抗体的间接ELISA方法的建立

目的建立检测伤寒沙门菌(Salmonella typhi)抗体的间接ELISA方法,并进行验证。方法对常规间接ELISA方法进行优化,确定抗原最适包被质量浓度及被检血清最佳稀释度、最适包被温度及时间、包被抗原与血清的最适温度和时间、血清与酶标二抗及封闭的最适温度和时间、酶标二抗最适工作质量浓度,并验证该方法的灵敏度、精密性、特异性及耐用性;用伤寒Vi多糖结合物原液和伤寒Vi多糖衍生物经小鼠大腿内侧皮下免疫,分别于免疫后第14、21、28、35天,经眼眶采全血,分离血清,应用建立的间接ELISA方法检测抗体水平,计算抗体几何平均滴度(GMT)。结果确定了间接ELISA方法最适工作条件:伤寒Vi荚膜多糖抗原最适包被质量浓度为5μg/ml,血清最佳稀释倍数为1∶40;最适包被温度及时间为4℃12 h;包被抗原与血清最适反应温度和时间为37℃2 h;血清与酶标二抗最适反应温度和时间为37℃1 h;封闭液最适封闭温度和时间为室温1 h;HRP标记的羊抗鼠IgG最佳反应浓度为1∶8 000。该方法灵敏度为1∶1 600;孔间和板间CV平均值分别为2.8%和5.8%;与其他血清无交叉反应;pH值、包被时间、包被温度及酶结合时间调整前后,同一样品检测的A450值差异无统计学意义(P0.05)。伤寒Vi多糖与蛋白载体偶联后,免疫原性明显增强,且白喉类毒素(diphtheria toxin DT)和重组铜绿假单胞菌外毒素A(recombinantPseudomonasaeruginosaexotoxinA,rEPA)两种不同载体偶联得到的结合物免疫原性无明显差异。结论成功建立了一种检测伤寒沙门菌抗体的间接ELISA方法,该方法具有较强的特异性、灵敏度及精密性。     

汉坦病毒半微量直接免疫酶斑减少中和试验方法的建立及其 …

采用辣根过氧化物酶标记兔抗－ＨＴＮＶ ＩｇＧ （ＨＲＰ－抗－ＨＴＮＶ）染色的半微量直接免疫酶斑减少中和试验,作为检测灭活汉坦病毒疫苗和病毒中和抗体及血清学分型的方法。该方法简便、特异、敏感、稳定,结果与经典的空斑减少中和试验比较差异无显著差异（Ｐ〉０．０５）,ＨＲＰ－抗－ＨＴＮＶ可识别ＨＴＮＶ和ＳＥＯＶ的共同抗原。灭活ＨＴＮＶ疫苗加强免疫和部分批次初次免疫诱导较好的交叉中和抗体应答,同型与异型中和     

人类免疫缺陷病毒抗体ELISA S/CO比值、核酸定量检测结果与确证检测阳性结果的相关性分析

目的探讨人类免疫缺陷病毒(human immunodeficiency virus,HIV)抗体ELISA检测S/CO比值、核酸定量检测结果与确证检测阳性结果的相关性。方法应用2种国产[北京万泰生物药业股份有限公司(以下简称万泰)和上海科华生物工程股份有限公司(以下简称科华)]抗-HIV诊断试剂(ELISA法)、1种进口(美国Bio-Rad公司,以下简称Bio-Rad)HIV抗原抗体诊断试剂(ELISA法)、1种核酸检测试剂(RT-PCR-荧光探针法)及WB确证试剂(Western blot法)对86份抗-HIV初筛阳性血浆样本进行检测,并进行相关性分析。结果 86份样本中,3种ELISA试剂检出的53份共同阳性样本WB确证结果均为阳性;25份共同阴性样本WB确证结果 20份为阴性,5份为不确定;检测结果不一致的8份样本WB确证结果 3份为不确定,5份为阴性。万泰和科华试剂检测样本S/CO比值≥10时,96.30%和100%的样本为WB确证阳性,1≤S/CO比值<10时,均有20%的样本为WB确证阳性;Bio-Rad试剂检测样本S/CO比值≥5时,100%的样本为WB确证阳性。核酸检测病毒载量≥103IU/ml时,97.87%的样本为WB确证阳性;0 IU/ml<病毒载量<103IU/ml时,53.85%的样本为WB确证阳性。86份样本中有15份ELISA检测、核酸检测及确证检测结果不完全一致,其中4份样本为核酸检测阳性,确证试剂检测结果为不确定,疑似HIV-1感染者样本。结论抗-HIV ELISA S/CO比值及核酸定量检测结果与确证检测阳性结果有一定相关性,S/CO比值及病毒载量对确证检测阳性结果的判定具有一定参考价值。     

汉坦病毒SEO型S基因的克隆及在大肠杆菌中的高效表达

目的构建汉坦病毒SEO型S基因原核表达载体。方法应用RT-PCR方法扩增汉坦病毒SEO型的YZG-Changchun株S基因,克隆至pMD18-T载体中,经酶切鉴定及PCR分析后,定向克隆入原核表达载体pET-28a中,转化E.coliRosetta,经IPTG诱导表达,SDS-PAGE和Western blot分析外源蛋白的表达情况。结果表达载体经双酶切和测序证明构建正确。IPTG浓度为1.0 mmol/L,诱导4.5 h时,S基因在原核细胞中得到了高效表达,表达的蛋白占菌体蛋白总量的37%,纯化后的蛋白具有良好的抗原活性。结论已成功构建了汉坦病毒SEO型S基因原核表达载体,并得到高效表达。     

双价纯化肾综合征出血热地鼠肾原代细胞疫苗的免疫效果

目的　考核双价肾综合征出血热地鼠肾原代细胞纯化疫苗 (汉滩型 +汉城型 )对人体的安全性及免疫原性。方法　分别选择南方和北方两个观察点 ,分别接种 5 18人和 6 5 0人 ,观察接种对象的副反应 ,并测定血清荧光抗体和中和抗体。结果　在观察中仅有 2人呈现度局部副反应 ,总反应率为 0 .5 0 %。IFA抗体阳转率为89.95 % ,ELISA抗体阳转率为 10 0 % ,GMT为 1735。中和抗体阳转率大于 87.38%。结论　该疫苗对人体安全 ,具有较好的免疫原性     

重组戊型肝炎病毒抗原工程菌的发酵及表达产物的纯化

目的建立重组戊型肝炎病毒抗原工程菌的发酵和目的蛋白纯化工艺。方法在三角烧瓶中,探讨不同的诱导剂浓度和培养基对菌体密度和目的蛋白表达量的影响;在10L发酵罐中,探讨诱导时间、补料方式、溶氧量对菌体密度和目的蛋白表达量的影响。根据目的蛋白的理化特性建立纯化工艺。结果重组HEV抗原工程菌在10L发酵罐分批补料培养中,采用0·1mmol/L的IPTG诱导4h,目的蛋白表达量约为25%,目的蛋白产率约为2·88g/L,且以包涵体形式存在。经过对包涵体粗纯、复性、纯化,SDS-PAGE分析,纯度可达95%以上。结论建立了周期短、产率高且稳定可靠的发酵及纯化工艺,为重组HEV抗原的大规模生产奠定了基础。     

细胞工厂培养沙鼠肾原代细胞制备肾综合征出血热灭活疫苗

目的用细胞工厂代替转瓶培养沙鼠肾原代细胞,制备肾综合征出血热(HFRS)疫苗,减少原代沙鼠用量,提高产量。方法在细胞工厂内培养沙鼠肾原代细胞,以15L转瓶培养作对照,比较两种容器内细胞生长及收获的病毒滴度和抗原含量;病毒液经超滤浓缩后,采用Sepharose-4FF介质色谱纯化,并进行各项检定。结果细胞工厂只需接种转瓶培养所需1/3量的沙鼠肾细胞,就能在同期与转瓶细胞数量相当。接种病毒后,转瓶中的细胞在收获第5次后已脱落(10～20)%,而细胞工厂中的细胞几乎没有脱落;收获至第9次时,细胞工厂中的细胞脱落率才达20%;每次收获的病毒液病毒滴度和抗原含量均较高,且稳定在一定范围。浓缩纯化后,各项检定指标均合格。结论使用细胞工厂培养沙鼠肾原代细胞制备HFRS疫苗不仅提高了收率,而且减少了培养空间,降低了污染,可替代转瓶大规模生产HFRS疫苗。     

SARS病毒核衣壳蛋白在大肠杆菌中的表达及纯化

目的在大肠杆菌中高效表达SARS核衣壳蛋白。方法将已合成的SARS-CoV N蛋白基因片段,克隆至pUC-18载体,与pET28质粒连接,转化大肠杆菌,进行SARS-CoV核衣壳融合蛋白表达。用SARS患者恢复期血清进行表达产物鉴定。用色谱方法进行表达产物的层析纯化。结果SARS病毒N基因在大肠杆菌中获得了高效表达,表达量占总蛋白的30%以上;经三步纯化后纯度达90%以上。结论已获得了SARS核衣壳蛋白样品。     

重组人白细胞介素-10在大肠杆菌中的表达及生物学活性分析

目的在大肠杆菌中表达重组人白细胞介素-10(Interleukin-10,IL-10),并检测其生物学活性。方法将IL-10基因重组到质粒pET11c中,转化BL21(DE),提取质粒,经酶切鉴定和测序分析;在25℃用低浓度的IPTG诱导表达,对包涵体IL-10稀释复性;经ELISA检测其含量,MC/9细胞增殖法检测其生物学活性。结果工程菌IL-10/pET11c/BL21诱导表达的目的蛋白以可溶性和包涵体两种形式存在,Westernblot鉴定证实为IL-10蛋白,两种形式的IL-10均具有一定的生物学活性。结论已成功地在大肠杆菌中表达了IL-10,为进一步纯化和制备IL-10的基因工程药物打下了基础。     

SARS病毒刺突蛋白片段在大肠杆菌中的表达和纯化

目的获得SARS病毒表面刺突蛋白片段。方法用PCR方法克隆SARSS2片段基因,并在大肠杆菌中进行表达。表达产物经SDSPAGE及Westernblot鉴定,阴离子交换层析纯化。结果SARS病毒S2片段基因在大肠杆菌中获得了高表达,表达量占总蛋白的50%以上;得到纯度大于90%的SARS蛋白样品。结论获得了能够应用于SARS疫苗研究的SARS蛋白样品。     

HIV-1型衣壳蛋白P24在大肠杆菌中的表达、纯化及鉴定

用聚合酶链式反应 (PCR)从 HIV - 1gag基因序列中扩增出衣壳蛋白 (P2 4)基因 ,插入表达载体p GEX- 4T3中 ,构成重组质粒 p GEX- p2 4,在大肠杆菌 BL 2 1中高效表达出重组 P2 4。经 Glutathione- Sepharose4B亲和层析纯化后 ,重组 P2 4在间接 EL ISA和免疫印迹中表现出很高的抗原特异性和免疫反应性。     

An Engineered Biocatalyst for the Synthesis of Glycoconjugates: Utilization of β1,3‐N‐Acetyl‐D‐glucosaminyltransferase from Streptococcus agalactiae Type Ia Expressed in Escherichia coli as a Fusion with Maltose‐Binding Protein

A fusion protein composed of β1,3‐N‐acetyl‐D ‐glucosaminyltransferase (β1,3‐GlcNAcT) from Streptococcus agalactiae type Ia and maltose‐binding protein (MBP) was produced in Escherichia coli as a soluble and highly active form. Although this fusion protein (MBP‐β1,3‐GlcNAcT) did not show any sugar‐elongation activity to some simple low‐molecular weight acceptor substrates such as galactose, Galβ(1→4)Glc (lactose), Galβ(1→4)GlcNAc (N‐acetyllactosamine), Galβ(1→4)GlcNAcβ(1→3)Galβ(1→4)Glc (lacto‐N‐tetraose), and Galβ(1→4)GlcβCer (lactosylceramide, LacCer), the multivalent glycopolymer having LacCer‐mimic branches (LacCer mimic polymer, LacCer primer) was found to be an excellent acceptor substrate for the introduction of a β‐GlcNAc residue at the O‐3 position of the non‐reducing galactose moiety by this engineered enzyme. Subsequently, the polymer having GlcNAcβ(1→3)Galβ(1→4)Glc was subjected to further enzymatic modifications by using recombinant β1,4‐D ‐galactosyltransferase (β1,4‐GalT), α2,3‐sialyltransferase (α2,3‐SiaT), α1,3‐L ‐fucosyltransferase (α1,3‐FucT), and ceramide glycanase (CGase) to afford a biologically important ganglioside; Neu5Aα(2→3)Galβ(1→4)[Fucα(1→3)]GlcNAcβ(1→3)Galβ(1→4)GlcCerα(IV3Neu5Acα,III3Fucα‐nLc4Cer) in 40% yield (4 steps). Interestingly, it was suggested that MBP‐β1,3‐GlcNAcT could also catalyze a glycosylation reaction of the LacCer mimic polymer with N‐acetyl‐D ‐galactosamine served from UDP‐GalNAc to afford a polymer carrying trisaccharide branches, GalNAcβ(1→3)Galβ(1→4)Glc. The versatility of the MBP‐β1,3‐GlcNAcT in the practical synthesis was preliminarily demonstrated by applying this fusion protein as an immobilized biocatalyst displayed on the amylose resin which is known as a solid support showing potent binding‐affinity with MBP.