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采用超声波-微波辅助酶解制备小麦抗性淀粉,以抗性淀粉收率为指标,在单因素试验基础上,进行Box-Behnken试验设计,对超声时间、微波时间、普鲁兰酶添加量和酶解时间4个因素进行响应面优化试验分析.结果表明:4个因素的影响主次关系为普鲁兰酶酶解时间>超声时间>普鲁兰酶添加量>微波时间.响应面优化试验确定超声波-微波辅助... 相似文献
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以马铃薯淀粉为原料,采用α-淀粉酶和普鲁兰酶相结合处理的方式制备马铃薯抗性淀粉,通过单因素试验分别考察了α-淀粉酶和普鲁兰酶的pH值、反应温度、反应时间、酶添加量对抗性淀粉(RS)得率的影响;进而采用Box-Behnken设计法对复合酶法制备马铃薯抗性淀粉的工艺参数进行优化;最终,采用Englyst法对马铃薯抗性淀粉消化性进行分析。结果表明,制备马铃薯抗性淀粉的最佳工艺条件为:α-淀粉酶,pH6.5、反应温度70℃、反应时间15 min、酶用量4 U/g;普鲁兰酶,pH值5.0、反应温度60℃、反应时间24 h、酶用量8 U/mL。此条件下,马铃薯抗性淀粉得率为(44.48±1.37)%。马铃薯淀粉经α-淀粉酶与普鲁兰酶联合处理后,不仅提高了其抗消化性,还使抗性淀粉(RS)得率显著提高,同时将马铃薯淀粉中快消化淀粉(RDS)降低至21.23%,而慢消化淀粉(SDS)增加至36.32%。该研究为后续马铃薯深加工及慢消化型食品开发提供一定的理论参考。 相似文献
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以微波预糊化籼米淀粉为原料,自制RS_3型马铃薯抗性淀粉为晶种,研究RS_3型籼米抗性淀粉的晶种诱导-双酶复合法制备工艺。利用扫描电子显微镜对淀粉颗粒形貌进行表征并研究淀粉的抗酶解性。在单因素试验的基础上,固定其他酶解条件,以RS_3型籼米抗性淀粉产率为响应值,确定晶种添加量、异淀粉酶添加量、普鲁兰酶添加量和普鲁兰酶酶解时间作为影响产率的主要因素,进行Box-Behnken响应面优化试验。得到RS3型籼米抗性淀粉的最佳制备工艺条件为:晶种添加量5%、异淀粉酶添加量8 U/g、普鲁兰酶添加量8 U/g、普鲁兰酶酶解时间3.50 h。在此最佳制备工艺条件下,RS_3型籼米抗性淀粉产率为27.42%,RS3失去原有的淀粉颗粒形貌,表面变得粗糙,结晶结构致密,具有较强抗酶解能力。 相似文献
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为了提高板栗抗性淀粉含量,并获得抗性淀粉制备方法的最适工艺参数,本研究优化了压热—普鲁兰酶法制备板栗抗性淀粉的工艺,在单因素试验基础上,采用响应面法研究淀粉悬浮液质量分数、普鲁兰酶添加量、酶解时间和冷凝时间对抗性淀粉得率的影响,建立各因素与抗性淀粉得率关系的数学回归模型。最终根据实际工艺操作确定最佳的制备工艺条件为淀粉悬浮液质量分数11.00%,酶添加量9 PUN/g、酶解时间10 h、冷凝时间15 h。在该制备条件下,测得抗性淀粉得率为64.90%,基本符合理论预测值(65.70%)。试验证明,响应面法能够提高板栗抗性淀粉的制备率。 相似文献
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以板栗淀粉为原料,采用普鲁兰酶进行脱支处理制备缓慢消化淀粉(SDS),通过单因素试验及响应面法优化制备工艺,以提高SDS的含量。制备板栗缓慢消化淀粉的最优工艺条件是:淀粉乳质量分数8%,普鲁兰酶浓度8.90 PUN/g淀粉,酶作用时间6.3 h,4℃回生52.2 h。在最佳工艺条件下,通过葡萄糖氧化酶法进行测定,酶改性的板栗淀粉中缓慢消化淀粉质量分数可达41.91%(预测值42.31%),并较板栗原淀粉中缓慢消化淀粉含量提高了5.43倍。试验表明,普鲁兰酶脱支处理是制备板栗缓慢消化淀粉的有效方法。 相似文献
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在对普鲁兰酶最佳酶解条件优化的基础上,采用普鲁兰酶与耐高温淀粉酶协同制备RS(resistantstarch),改变淀粉的聚合度,分析玉米淀粉聚合度与抗性淀粉得率的关系。结果表明:提高原料淀粉中直链淀粉含量并将其聚合度控制在一定程度,可有效的提高RS得率,同时,DSC(differentialscanningcalorimeter)和X-衍射图谱表明,抗性淀粉与原玉米淀粉在结构上有着显著差异。 相似文献
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采用微波辅助酶解制备玉米抗性淀粉,以玉米抗性淀粉收率为指标,在单因素试验基础上,进行BoxBehnken试验设计,对耐高温α-淀粉酶添加量和酶解时间、普鲁兰酶添加量和酶解时间4个因素进行响应面优化试验分析。结果表明4个因素的影响主次关系为普鲁兰酶酶解时间耐高温α-淀粉酶酶解时间耐高温α-淀粉酶添加量普鲁兰酶添加量。响应面优化试验确定微波辅助酶解制备玉米抗性淀粉的最优工艺参数:耐高温α-淀粉酶添加量3 U/g干淀粉、酶解时间30 min,普鲁兰酶添加量8 U/g干淀粉、酶解时间4.5 h。 相似文献
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以普通玉米淀粉为试验材料,采用响应面法优化普鲁兰酶酶法制备玉米抗性淀粉的工艺参数。结果表明,普鲁兰酶加量、酶解时间、老化温度以及老化时间对抗性淀粉含量均有显著影响,所建回归模型高度显著,充分反映抗性淀粉含量与各因子之间的关系。优化工艺参数为普鲁兰酶加量20 U/g,酶解时间24 h,酶解物在4℃条件下存放老化36 h,样品抗性淀粉质量分数为9.75%,相比原淀粉增幅达89.4%。电镜扫描结果显示普鲁兰酶酶法制备的玉米抗性淀粉颗粒形貌呈不规则形状,原淀粉颗粒结构形态被破坏。 相似文献
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以淀粉型甘薯为原料,利用单因素试验研究不同淀粉乳质量浓度、pH值、压热温度、压热时间及冷却回生时间对甘薯三型抗性淀粉(resistant starch type 3,RS3)得率的影响,并通过响应面设计优化制备工艺。结果显示,响应面试验得出的最优制备条件为淀粉乳浓度13%、pH5.5、压热温度110℃、压热时间35 min,此时RS3得率为37.94%,与预测值仅相差0.92%,响应面模型与实际情况拟合良好。甘薯抗性淀粉RS3的体外抗消化特性研究表明,RS3的酶解率和模拟消化道的消化率低,展示很强的抗酶解、抗消化特性。电镜结果显示,RS3颗粒呈不规则块状,表面凹凸不平;结晶型以B型为主,颗粒有序度降低,双螺旋程度和结晶度提高,与原淀粉相比结构更加紧密,这些结构特性可以解释甘薯RS3的抗消化特性。 相似文献
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为优化何首乌抗性淀粉(resistant starch,RS)的纯化工艺,并考察其对大肠杆菌增殖效力的影响。基于单因素试验,采用Box-Behnken响应面法,以淀粉乳浓度、酶添加量、酶解时间为考察因素,RS含量为指标,优化RS纯化工艺;测定何首乌RS与纯化后RS的碘吸收曲线、平均聚合度;以RS为培养基碳源,采用体外发酵考察何首乌RS及纯化后RS对大肠杆菌增殖的影响。结果表明:最佳纯化条件为淀粉乳浓度16%、酶添加量22 U/g、酶解时间42 min条件下纯化RS,RS含量为(43.23±0.26)%。纯化后RS的碘结合能力明显提高,平均聚合度为47.03;纯化后RS表面呈现多孔结构。与葡萄糖培养基相比,纯化RS可显著降低大肠杆菌的增殖。 相似文献
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以玉米淀粉为实验原料,以甲基紫吸附率为响应值,采用Plackett-Burman (PB)和Box-Behnken Design (BBD)法优化复合酶-间歇超声法制备多孔淀粉工艺。同时,用扫描电镜(SEM)对多孔淀粉颗粒的微观形态进行了分析。Box-Behnken响应面法优化结果表明,制备玉米多孔淀粉最佳条件为:水浴加热预处理15 min,底物淀粉浓度33. 33%、酶用量0. 4%(相当于10. 87 IU/g)、酶配比(糖化酶:α-淀粉酶)9:1、pH 5. 0,反应温度50℃、反应时间10 h,超声功率250 W,超声时间29. 83 min,吸附率为62. 42%,是原淀粉对甲基紫吸附率的2. 8倍。电镜微观形态分析显示,多孔淀粉微孔的吸附率变化与其微观结构变化相吻合。 相似文献
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利用Box-Behnken响应面法对超声波辅助提取酸枣多糖工艺进行优化。在单因素试验基础上,选择超声波功率、超声时间和液料比为考察因素,以酸枣多糖提取得率为评价指标,采用Box-Behnken响应面法考察各个因素及其交互作用对酸枣多糖提取得率的影响。最佳提取工艺为:超声波功率为360 W,超声时间为23 min,液料比为45∶1(m L/g)。在优化提取工艺参数条件下提取3批酸枣,平均提取得率为(4.8±0.69)%(n=3)。利用Box-Behnken响应面法优化超声波辅助提取酸枣多糖工艺,方法简便,预测性良好。 相似文献
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探究超声-微波协同酶法制备芸豆抗性淀粉的最佳工艺条件及其物理结构特性。以紫花芸豆为试验材料,利用超声-微波协同酶法制备RS3型抗性淀粉,考察不同水平时淀粉悬浮液质量分数、超声时间、普鲁兰酶添加量和微波功率对抗性淀粉得率的影响,同时做响应面优化试验;通过扫描电镜、红外光谱、凝胶渗透色谱仪等方法分析芸豆淀粉及抗性淀粉的结构特性。结果表明:淀粉悬浮液质量分数16%、普鲁兰酶添加量12.5 ASPU/g(干基)、微波功率300 W、超声-微波协同处理20 min时,芸豆抗性淀粉得率最高为(24.37±0.41)%。与原淀粉相比,芸豆抗性淀粉颗粒破损,呈形状大小各异的块状碎石结构;抗性淀粉未出现新的特征吸收峰;处理后的芸豆抗性淀粉平均聚合度降低,多分散系数降低。超声-微波协同酶解法可提高芸豆抗性淀粉得率,抗性淀粉形成过程中淀粉官能团没有变化,其余结构特性改变。 相似文献
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抗酶解小麦淀粉制备工艺研究 总被引:1,自引:0,他引:1
采用酸变性和沸水浴的方法 ,对小麦淀粉进行处理 ,以抗酶解淀粉得率作为评价指标 ,通过正交试验和响应面分析 ,得出小麦抗酶解淀粉最优制备条件为 :酸解时间为 1 96h、水与淀粉的比为 8 14∶1、沸水浴时间为 2 14h、盐酸用量为 1 38% ;抗酶解淀粉得率 13 0 1%。 相似文献