两种PCR方法检测食品中花生过敏原Arah1成分

采用套式PCR和荧光实时定量PCR两种方法检测食品中花生主要过敏原Ara h1基因成分,从而推断食品中是否含有花生过敏原成分。根据GenBank提供的花生主要过敏原基因Ara h1 DNA序列(登录号为AF432231)的中一段序列分别设计2对内外特异性引物,扩增目的基因片段来建立套式PCR方法;再用上述内引物扩增目的片段,建立SYBRGreenⅠ荧光实时定量PCR方法,绘出拷贝数-CT标准曲线;并通过这2种PCR方法检测8种食品中含有花生主要过敏原Ara h1基因成分。套式PCR方法具有较高的特异性和灵敏度,SYBR GreenⅠ荧光实时定量PCR方法的标准曲线在3×102至3×108 copies范围内线性关系良好,R2值为0.993 5,检测低限设定为3×103 copies。2种方法检测8种食品样品,结果均与食物过敏原标注内容相符。本研究建立的2种方法具有快速、灵敏等优点,可用于食品中花生主要过敏原基因Ara h1成分的检测。     

芥末等8种食物过敏原的多重PCR检测技术

依据芥末Sin a I基因、羽扇豆核糖体内转录间隔区(ITS)基因、胡桃Jug r 2基因、榛果Oleosin基因、芹菜Mtd基因、杏仁Pru du 1基因、燕麦Avenin基因和芝麻2S albumin mRNA基因设计的特异性引物序列,在普通PCR方法的基础上,通过2组4重PCR扩增,建立了同时检测芹菜、杏仁、燕麦、芝麻、芥末、羽扇豆、胡桃和榛果等8种食物过敏原的方法。该方法特异性强,灵敏性高,可应用于食品中多种食物过敏原的快速检测和监控。     

实时定量PCR技术检测食品中花生过敏原Ara h1基因成分

采用Taqman探针PCR技术,建立食品中花生主要过敏原基因Ara h1的检测方法.根据GenBank提供的Ara h1基因(序列号AF432231)中一段DNA序列设计特异性引物与Taqman探针,扩增该目的基因,建立拷贝数-CT标准曲线,可通过标准曲线方程计算食品中含有花生主要过敏原Ara h1基因拷贝数(copies),并用于检测8种食品中是否含有残留的该过敏原基因.此标准曲线在1.5×103copies～1.5×107copies范围内线性关系良好,R2值为0.9759;8种样品检测结果与食物过敏原标注内容相一致.     

食品中杏仁过敏原成分的检测

目的：建立检测食品中桃仁、杏仁过敏原成分的荧光PCR 方法,比较国外3 种ELISA 试剂盒效果。方法：针对杏仁Pru du1 基因设计引物及探针,建立荧光PCR 方法。利用杏仁过敏原参考物质对3 个品牌的ELISA试剂盒的回收率进行比较。结果：建立的荧光PCR 方法,具有很好的特异性;灵敏度为10mg/kg。结论：桃仁及杏仁过敏原成分荧光PCR 检测方法特异性好、灵敏度高,对食品中过敏原的检测有重要的实际意义。     

荧光定量PCR方法检测榛果过敏原成分

目的建立榛果过敏原成分的荧光定量PCR检测方法,并将此方法与酶联免疫吸附法(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)方法进行比对实验。方法根据榛果成分oleosin特异性基因设计并筛选合适的引物和探针,优化反应体系和反应条件,建立榛果过敏原成分的荧光定量PCR检测方法,对荧光定量PCR方法与ELISA方法检测结果进行分析。结果建立的榛果过敏原成分荧光定量PCR方法特异性良好,可用于榛果过敏原成分的定量检测,但检测灵敏度低于ELISA检测方法。结论所建立的榛果过敏原成分的荧光定量PCR检测方法特异性好,灵敏度达到10 mg/kg,具有较好的实用性,ELISA检测方法灵敏度高于荧光定量PCR法,但当榛果过敏蛋白被破坏后有可能出现假阴性结果。     

小麦和榛子过敏原成分检测的实时荧光PCR方法

过敏原风险问题已成为重要的食品安全问题,如何快速准确地检测出食物中的过敏原成为当前亟需解决的关键。目前常用的过敏原检测方法有免疫学检测、质谱及SPR等技术,但这些方法均有一定程度的局限性。通过引入分子生物学鉴定手段,建立小麦、榛子的过敏原基因数据库,并依据数据库寻找特异性序列并设计探针引物,建立一种快速、便捷、高效的过敏原检测方法,并适当调整了方法的检出限,降低了检测误判的风险。通过建立实时荧光PCR方法,可快速筛选样品的过敏原基因,简化了食品中过敏原成分的鉴定,降低了实验成本与技能要求,降低了检测的难度,缩短了实验时间。通过适用性验证与检出限验证实验,该方法用于过敏原成分鉴定可以达到理想的效果,重复性好,准确率高,检出限为1%。     

实时荧光PCR法检测食品和饮料中胡萝卜成分的研究

胡萝卜是一种质脆味美的家常蔬菜,同时也是一种常见的食品过敏原。针对胡萝卜抗冻蛋白基因的保守序列,设计特异性引物和探针,经验证和条件优化,建立胡萝卜成分的实时荧光PCR检测方法。经实验比较,针对胡萝卜抗冻蛋白设计合成的引物和探针具有相对较高的灵敏性,检测限可达1 ng DNA,而且和常见的食物种类无交叉反应,适于胡萝卜成分的检测。该方法的建立,对于加强食品过敏原的标识管理,保护消费者利益、促进进出口贸易具有重要意义。     

苹果汁和桃汁种类特异性PCR检测方法的研究

本文采用苹果属过敏原蛋白的mal d 4.02基因,桃属微卫星标记MA023a分别作为苹果汁和桃汁特异性引物,并以植物高度保守的叶绿体AccD基因作为内标物,利用PCR检测方法对两种果汁进行种属鉴定。结果表明,特异性PCR检测方法可以准确的对苹果和桃产品进行种属鉴定,苹果、桃属特异性PCR检测方法的最低检测限分别为5、10ng/μL,此方法能快速、准确对苹果汁和桃汁种类进行定性鉴定和掺假检测。     

食品中牛奶过敏原成分LAMP检测方法的建立

目的 建立食品过敏原牛奶成分LAMP检测方法,并与实时荧光PCR(real-time PCR)检测方法比对。方法 针对牛线粒体细胞色素b(cyt-b)基因设计LAMP引物并建立反应体系,在特异性和灵敏度方面与real-time PCR检测方法比对。结果 本研究建立的LAMP方法检测9份不同品牌的牛奶和羊奶及其加工制品,没有出现交叉反应,具有良好的特异性。通过添加试验方法的检测灵敏度为0.5 %,与real-time PCR方法检测灵敏度相当。检测了69份实际样品,检测结果与real-time PCR检测结果一致。结论 本研究建立的食品过敏原牛奶成分LAMP检测方法简单经济,检测结果可靠,可有效缩短检测时间,适用于过敏原牛奶成分的检测,具有良好的应用前景。     

食品中牛奶过敏原成分LAMP检测方法的建立

目的建立食品过敏原牛奶成分LAMP(loop-mediated isothermal amplification)检测方法,并与实时荧光PCR(real-time PCR)检测方法比对。方法针对牛线粒体细胞色素b(cyt-b)基因设计LAMP引物并建立反应体系,在特异性和灵敏度方面与real-time PCR检测方法比对。结果本研究建立的LAMP方法检测9份不同品牌的牛奶和羊奶及其加工制品,没有出现交叉反应,具有良好的特异性。该方法的检测灵敏度为0.5%,与real-time PCR方法检测灵敏度相当。检测了69份实际样品,检测结果与real-time PCR检测结果一致。结论本研究建立的食品过敏原牛奶成分LAMP检测方法简单经济,检测结果可靠,可有效缩短检测时间,适用于过敏原牛奶成分的检测,具有良好的应用前景。     

3种致病菌多重PCR检测体系的建立及应用

金黄葡萄球菌(Staphylococcus aureus,SA)、单核细胞增生性李斯特菌(Listeria monocytogen,LM)和蜡样芽孢杆菌(Bacillus cereus,BC)是食品中重要的致病菌,建立其多重PCR的快速检测体系,对开发食源性致病微生物快速检测试剂盒具有重要意义。根据SA的nuc基因、LM的hly基因和BC的hemolysin基因,设计合成3对特异性引物,然后进行单基因PCR反应特异性验证。在此基础上建立了3种致病菌的多重PCR检测体系,并应用于食品检测中,同时以国标法进行对比验证。结果表明,建立的多重PCR检测方法简单、快速、灵敏度高,检测灵敏度可达到1 cfu/mL,整个检测时间在16 h以内,具有较大的应用价值,可广泛应用于食品卫生检测以及临床检验等领域。     

双正交优化多重PCR检测食源性致病菌的研究

为了建立快速检测食源性致病菌的多重PCR检测方法,根据沙门氏菌fimY基因、单增李斯特氏菌hlyA基因和小肠结肠炎耶尔森氏菌ail基因设计3对特异性引物,利用双正交法分别对多重PCR反应体系中的3对引物比进行L9(33)正交优化和Taq酶、dNTPs、镁离子、混合引物的添加量进行L16(44)正交优化,并对Buffer的反应浓度进行优化。结果扩增出了3条特异性目的条带,建立的多重PCR方法具有很好的特异性。人工污染食品,9h富集培养增菌后的检出限可达100cfu/g。因此,该检测方法具有较强的实际应用价值,为检测多种食源性致病菌提供了有效的方法参考。     

多重荧光定量PCR检测食品污染菌

目的:建立食品中多种细菌同时检测的方法。方法:以肠杆菌科细菌16S RNA、金黄色葡萄球菌FemB基因以及和沙门氏菌的invA基因为目标,设计相应的引物和Taqman探针;分别构建重组质粒作为模板,并建立3种菌属各自荧光定量PCR检测方法和多重荧光PCR体系,考察各方法的灵敏性,并比较多重荧光PCR与单重体系下检测结果的一致性。结果:多重荧光PCR体系与单重体系具有很好的一致性。结论:多重荧光定量PCR能够实现在同一反应体系下同时对食品中多种污染菌进行准确快速的检测。     

动物性食品源空肠弯曲杆菌二重PCR检测方法的建立及应用

根据GenBank空肠弯曲杆菌(Campylobacter jejuni,Cj)的16S rDNA及hipO(编码马尿酸酶基因)序列设计两对特异引物,建立检测动物性食品源Cj的二重PCR方法,并应用于样品检测。结果显示只对Cj能特异的扩增出699bp和366bp两个基因片段,而大肠杆菌、沙门氏菌等其他11种细菌均未扩增出条带;Cj标准株ATCC33560的16S rDNA及hipO序列与GenBank其他Cj的相应序列具高度相似性(分别为99.7%~99.9%,98.1%~99.7%);该方法可在27h内完成,其灵敏度为2.4~16 CFU/mL;四川省雅安市鸡肉、猪肉、牛肉和牛奶样品中的Cj阳性率分别为38.0%(19/50)、28.3%(15/53)、17.1%(6/35)和8.6%(4/46)。     

多重PCR快速检测三种食品病原菌

建立一种快速、经济、实用的可以同步检测食品中金黄色葡萄球菌、沙门氏菌、小肠结肠炎耶尔森氏菌的多重聚合酶链式反应(polymerase chain reaction,PCR)的方法。根据金黄色葡萄球菌的nuc基因,沙门氏菌的invA基因,小肠结肠炎耶尔森氏菌的ail基因,分别设计了三对引物,对单个基因PCR和单管多重PCR扩增进行特异性、灵敏性实验以及优化反应体系。三对引物能特异性扩增出236、475、127bp的目的条带。建立的多重PCR同时对3种食源性致病菌进行检测具有较高的灵敏度,灵敏度金黄色葡萄球菌为102CFU/mL、沙门氏菌为102CFU/mL、小肠结肠炎耶尔森氏菌为102CFU/mL。初步建立能同步、简便、快速、灵敏地检测食品中金黄色葡萄球菌、沙门氏菌和小肠结肠炎耶尔森氏菌的三重PCR方法。     

A multiplex polymerase chain reaction assay for rapid detection and identification of Escherichia coli O157:H7 in foods and bovine feces

A multiplex polymerase chain reaction (PCR) assay was designed to simplify detection of Escherichia coli O157:H7 and to identify the H serogroup and the type of Shiga toxin produced by this bacterium. Primers for a plasmid-encoded hemolysin gene (hly933), and chromosomal flagella (fliCh7; flagellar structural gene of H7 serogroup), Shiga toxins (stx1, stx2), and attaching and effacing (eaeA) genes were used in a multiplex PCR for coamplification of the corresponding DNA sequences from enterohemorrhagic E. coli (EHEC) O157:H7. Enrichment cultures of ground beef, blue cheese, mussels, alfalfa sprouts, and bovine feces, artificially inoculated with various levels of E. coli O157:H7 strain 933, were subjected to a simple DNA extraction step prior to the PCR, and the resulting amplification products were analyzed by agarose gel electrophoresis. Sensitivity of the assay was < or = 1 CFU/g of food or bovine feces (initial inoculum level), and results could be obtained within 24 h. Similar detection levels were obtained with ground beef samples that underwent enrichment culturing immediately after inoculation and samples that were frozen or refrigerated prior to enrichment. The multiplex PCR facilitates detection of E. coli O157:H7 and can reduce the time required for confirmation of isolates by up to 3 to 4 days.     

原料乳中多种致病菌的快速过滤富集及多重PCR检测

针对目前原料乳中致病菌的检测方法繁琐费时耗力的缺点,建立一种能同时检测原料乳中多种致病菌的快速检测方法,采用多重PCR快速灵敏检测技术与一种不需要预增菌就可以直接从原料乳中快速过滤富集菌体的技术相结合来同时检测原料乳中主要致病菌——沙门氏菌、大肠杆菌O157:H7、金黄色葡萄球菌、单增李斯特氏菌和蜡样芽孢杆菌。整个过程只需7～8h即可完成,且检测灵敏度可达102cfu/mL。这种方法是对传统检测方法的有效改进,并且达到了原料乳检测快速、准确、灵敏的要求。     

单增李斯特菌毒力因子多重荧光PCR法 建立与应用

目的建立同时检测单增李斯特菌(Listeria monocytogenes)及其3种毒力因子的多重荧光PCR快速检测方法,并应用于日常食品的检测。方法根据单增李斯特菌溶血素基因hly A、内化素基因inl A和表面蛋白act A基因的保守序列,分别设计合成特异性引物和探针,优化多重荧光PCR反应体系。对该方法的特异性、敏感性和重复性进行评估。结果该法特异性强、敏感性高,对单增李斯特菌纯培养物的最低检出限410cfu/m L;重复性好,变异系数均小于2%。对84份食品检测结果与传统国标法相符,共检出单增李斯特菌4份,检出率为4.76%。多重荧光PCR检测方法耗时1 h,比传统方法节约2~5 d。4株单增李斯特菌分离株中2株同时含有inl A、act A、hly A 3种毒力基因,另2株为毒力基因act A缺失株,提示目前流行株并非同一来源。结论本研究建立的多重实时荧光PCR方法能同时对单增李斯特菌及其3种毒力因子进行快速检测,且灵敏度高、特异性好,为食源性疾病的病原学检测提供了快速可靠的方法。     

A multiplex PCR assay based on 16S rRNA and hly for rapid detection of L. monocytogenes in Milk

A multiplex PCR assay was developed by targeting ‘16S rRNA’ and ‘hly’ genes for detection of Listeria or Listeria monocytogenes in dairy foods on the basis of amplification of 1200 and 713 bp products, respectively. The assay conditions were optimized to make it truly rapid and to cut down the cost. The authenticity of the multiplex PCR was ascertained by using Nested PCR targeted against internal region of ‘hly’ gene that produced an amplified product of 188 bp. The multiplex PCR assay was found to be specific for detection of L. monocytogenes only since none of the non-listerial cultures gave positive signal. The sensitivity of the multiplex PCR was limited to 10 ng pure DNA and 1–10 cells of L. monocytogenes after 4–6 h enrichment in Listeria enrichment broth. When applied to 20 raw milk and 10 pasteurized milk samples, L. monocytogenes could not be detected in any of the samples by the multiplex PCR assay. This assay could find potential application in dairy industry for monitoring dairy foods for this high risk food pathogen on routine basis.     

A novel multiplex PCR assay for rapid and simultaneous detection of five pathogenic bacteria: Escherichia coli O157:H7, Salmonella, Staphylococcus aureus, Listeria monocytogenes, and Vibrio parahaemolyticus

Rapid and sensitive detection techniques for foodborne pathogens are important to the food industry. However, traditional detection methods rely on bacterial culture in combination with biochemical tests, a process that typically takes 4 to 7 days to complete. Thus, this study was conducted to address the issue of time lag inherent in traditional methods by developing a novel PCR assay for each of five foodborne pathogenic bacteria. This new system consists of a simultaneous screening method using multiplex PCR in a single reaction tube for the rapid and sensitive detection of each of the five bacteria. Specific primers for multiplex PCR amplification of the Shiga-like toxin (verotoxin type II), femA (cytoplasmic protein), toxR (transmembrane DNA binding protein), iap (invasive associative protein), and invA (invasion protein A) genes were designed to allow simultaneous detection of Escherichia coli O157:H7, Staphylococcus aureus, Vibrio parahaemolyticus, Listeria monocytogenes, and Salmonella, respectively. To confirm the specificity of each primer pair for the respective target gene, three types of experiments were carried out using boiled cell lysates and their DNAs. In the multiplex PCR with mixed DNA samples, specific bands for corresponding genes were simultaneously detected from a single reaction. The detection of all five foodborne pathogenic bacteria could be completed in less than 24 h with this novel PCR method.