Single amino acid substitutions can further increase the stability of a thermophilic L-lactate dehydrogenase

Lactate dehydrogenases are of considerable interest as stereospecificcatalysts in the chemical preparation of enantiomerically pure-hydroxyacid synthons. For such applications in synthetic organicchemistry it would be desirable to have enzymes which tolerateelevated temperatures for prolonged reaction times, to increaseproductivity and to extend then applicability to poor substrates.Here, two examples are reported of significant thermostabilizations,induced by sitedirected mutagenesis, of an already thermostableprotein, the L-lactate dehydrogenase (EC 1.1.1.27 [EC] , 35 kDa permonomer subunit) from Bacillus stearothermophilus. Thermal inactivationof this enzyme is accompanied by irreversible unfolding of thenative protein structure. The replacement of Argl71 by Tyr stabilizesthe enzyme against thermal inactivation and unfolding. Thisstabilizing effect appears to be based on improved interactionsbetween the subunits in the core of the active dimeric or tetramericforms of the enzyme. The thermal stability of L-lactate dehydrogenasevariants with an active site Arg residue, either in the 171(wild-type) or in the 102 position, is further increased bysulfate ions. The two stabilizing effects are additive, as foundfor the Argl71Tyr/ Gln1O2Arg double mutant, for which the stabilityof the protein in 100 mM sulfate solution reaches that of L-lactatedehydrogenases from extreme thermophiles. All mutant proteinsretain significant catalytic activity, both in the presenceand absence of stnhilfoing salts, and are viable catalysts inpreparative scale reactions.     

Bitterstoffe beim Erhitzen von Saccharose, Maltose und Prolin 2. Mitteilung

Summary In addition to the mono- and dipyrrolidinohexosereductones described recently (Z Lebensm Unters Forsch (1984) 178:356) two further bittertasting compounds were isolated from heated mixtures of proline and sucrose (molar ratio 3: 1, 190 °C, 30 min) and also synthesized, namely 2,3-bis-(1-pyrrolidinyl)2-cyclopenten-l-one and 2,3-bis(1-pyrrolidinyl)-5methyliden-2-cyclopenten-l-one. The recognition thresholds (mmol/1) are 0.15–0.25 and 0.06–0.12 respectively. Both compounds have a burning bitter taste character. From a maltose-proline reaction mixture 2--glucosyl-5-hydroxy-5-methyl-4-piperidinyl-2-cyclopenten-1-one was isolated. When the dihydroxypyranone VI was heated with proline, 2,5-dihydroxy-5-methyl-4-prohnyl-2-cyclopenten-1-one and the cyclopent(b)azepinones XI and XII were among the compounds formed. These compounds also have a bitter taste character.Zusammenfassung Zusätzlich zu den kürzlich beschriebenen Mono- and Dipyrrolidinohexosereduktionen (Z Lebensm Unters Forsch (1984) 178:356) wurden zwei weitere bittere Verbindungen aus erhitzten Mischungen von Prolin and Saccharose (Molverhältnis 3:1, 190 °C, 30 min) isoliert and synthetisiert. Es handelt sich um 2,3-Bis-(1-Pyrrolidinyl)-2-cyclopenten-1-on und 2,3-Bis-(1-Pyrrolidinyl)-5-methyliden-2-cyclopenten-1-on. Die Erkennungsschwellenwerte (mmol/1) sind 0,15-0,25 and 0,06-0,12. Beide Verbindungen haben einen brennend-bitteren Geschmack. Aus einem Maltose-Prolin-Umsetzungsgemisch gelang die Isolierung des 2--Glucosyl-5-hydroxy-5-methyl-4-piperidinyl-2-cyclopenten-1-ons. Bei der Reaktion des Dihydropyranons VI mit Prolin wurden u. a. das 2,5-Dihydroxy-5-methyl-4-prolinyl2-cyclopenten-1-on sowie die Cyclopent(b)azepinone XI and XII gebildet. Diese Verbindungen sind ebenfalls mehr oder weniger stark bitter.     

Accumulation of nitrite and sulfite in yeast cells and synergistic depletion of the intracellular ATP content

Summary When nitrite or sulfite are applied to yeast cells below pH 5.0, an enormous intracellular accumulation occurs. It is assumed that nitrite and sulfite penetrate the cell membrane in their undissociated forms as nitrous acid (pK = 3.3) or sulfurous acid (pK =1.8), respectively. Due to the neutral intracellular pH they are trapped inside the cell in their anionic forms, which are impermeable to the cell membrane. It has previously been shown that sulfite causes a rapid depletion of the ATP content of yeast cells [Schimz, K. L. and Holzer, H. (1979) resp. Hinze et al. as above]. Similarly, millimolar concentrations of nitrite decrease the ATP level to less than 10% of the initial value. Nitrite and sulfite in combination deplete the ATP content of yeast cells much stronger than expected for the sum of the separate effects of these compounds (synergistic effect).

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Akkumulation von Nitrit und Sulfit in Hefezellen und synergistischer Abfall des intrazellulären ATP-Gehalts

Zusammenfassung Wenn Hefezellen mit Nitrit oder Sulft bei pH-Werten unter 5,0 inkubiert werden, beobachtet man eine starke intracelluläre Akkumulation von Nitrit, bzw. Sulfit. Es ist anzunehmen, daß Nitrit und Sulfit in ihrer undissoziierten Form als salpetrige Säure (pK=3,3) bzw. schweflige Säure (pK=1,8) penetrieren und dann in den Zellen durch Neutralisation zu den anionischen Formen, die die Zellmembran nicht mehr permeieren können, abgefangen werden. Ähnlich dem früher beschriebenen raschen Abfall des ATP-Gehaltes nach Zusatz von Sulfit in Hefe [Schimz, KL und Holzer H (1979) Arch Microbiol 121:225–229] und in Bakterien [Hinze H, Maier K, Holzer H (1981) Z Lebensm Unters Forsch 172:389-392] verursacht auch Nitrit einen raschen Abfall des ATP-Gehaltes in Hefe auf weniger als 10 % des Anfangswertes. Werden Nitrit und Sulfit in Kombination verabreicht, so beobachtet man einen wesentlich stärkeren Abfall des ATP-Gehaltes als er aus der Summe der Einzeleffekte von Nitrit, bzw. Sulfit zu erwarten wäre (Synergistischer Effekt).

     

Control of yeast neutral trehalase by distinct polyphosphates and ribonucleic acid

Summary The activity of yeast trehalase when assayed at pH 7 in a crude extract was found to increase 2- to 3-fold upon incubation with 0.1 % (v/v) polyethyleneimine or other polycations such as polylysine (0.075-mMol) and calf thymus histories (0.08 mMol). Incubation with 3 mM-Mn²⁺ and 5 mM-Ca²⁺ also led to 3- and 1.6-fold increases in trehalase activity, respectively. The activities of 11 other enzymes assayed in the crude yeast extract did not increase after addition of polyethylene imine. At concentrations of polyethylenemine that maximally stimulated trehalase activity, 97% of the total RNA present in the crude extract, 40% of total protein, and 60% of the polyphosphate (assayed as inorganic phosphate liberated during 7 min incubation at 95 °C and pH O) were found to be precipitated. A similar finding was made with trehalase-stimulating concentrations of Mn²⁺. Activation of trehalase by polyethylene imine rendered this enzyme susceptible to inhibition by a preparation of total yeast RNA, inorganic polyphosphates, and related polyanions. We present further evidence that the removal of a distinct RNA and/or polyphosphate is the basic principle of polyetyleneimine-induced activation of trehalase.A more pronounced stimulation of trehalase activity (4-fold) could be obtained by enzymatic phosphorylation with ATP in the presence of cyclic AMP and Mg²⁺ as described by van Solingen and van der Plaat (1975) [9]. Thus, trehalase 2-fold activated by polyethylene imine was further activated by another 2-fold increase by enzymatic phosphorylation. Conversely, no additional stimulation by polyethylene imine was obtained for the maximally active, phosphorylated enzyme. We conclude that phosphorylation-mediated activation of trehalase is a two-step event, one being the removal of an inhibitor, which can be achieved by polyethylene imine or related cations independent on phosphorylation. The most likely candidate for the inhibitor appears to be a distinct RNA.

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Kontrolle der neutralen Hefen-Trehalase durch bestimmte Polyphosphate und RNA

Zusammenfassung Die in einem rohen Extrakt aus Hefe bei pH 7 gemessene Aktivität von Trehalase nimmt bei der Inkubation mit 0,1% Polyethylenimin oder mit anderen Polykationen, wie Polylysin (0,075 mmol) oder Histon aus Kalbsthymus (0,08 mmol) auf das zwei- bis dreifache zu. Auch die Inkubation mit 3 mmol Mn²⁺ oder 5 mmol Ca²⁺ führt zu einer 3-, bzw. 1,6fachen Zunahme der Trehalase-Aktivität. Die Aktivität von 11 anderen Enzymen, die im rohen Extrakt aus Hefe bestimmt wurden, nimmt nach Zusatz von Polyethylenimin nicht zu. Bei der Inkubation mit Polyethylenimin, das eine maximale Stimulierung der Trehalase-Aktivität bewirkt, werden 97% der gesamten Ribonucleinsäure, 40% des gesamten Proteins und 60% des Polyphosphats (bestimmt als anorganisches Phosphat, das in 7 min bei 95 °C und pH O freigesetzt wird) präcipitiert. Eine gleichartige Präcipitation wurde bei der Inkubation mit Trehalase-stimulierenden Konzentrationen von Mn²⁺ beobachtet. Mit Polyethylenimin aktivierte Trehalase wird durch Ribonucleinsäure aus Hefe, anorganisches Polyphosphat und verwandte Polyanionen gehemmt. Vermutlich führt die Entfernung einer bestimmten Ribonucleinsäure-Fraktion und/oder von Polyphosphat zu der Polyethylenimin-induzierten Aktivierung der Trehalase.Wie von van Solingen und van der Plaat 1975 beschrieben [9], wird eine 4fache Stimulierung von Trehalase durch enzymatische Phosphorylierung mit ATP in der Gegenwart von cyclischem AMP und Mg²⁺ erreicht. Das so durch Phosphorylierung maximal aktivierte Enzym kann durch Zusatz von Polyethylenimin nicht weiter aktiviert werden. Das mit Polyethylenimin 2fach aktivierte Enzym kann jedoch noch einmal 2fach weiter aktiviert werden durch enzymatische Phosphorylierung. Aus diesen Beobachtungen wird geschlossen, daß die durch enzymatische Phosphorylierung bewirkte Aktivierung der Trehalase ein zweistufiger Vorgang ist: Zuerst findet die Entfernung eines Inhibitors statt (dies kann auch mit Polyethylenimin oder mit verwandten Kationen unabhängig von der enzymatischen Phosphorylierung erreicht werden), hierauf folgt weitere Aktivierung durch Konformationsänderung des Enzyms. Wahrscheinlich handelt es sich bei dem durch Phosphorylierung bzw. Behandlung mit Polyethylenimin abgetrennten Inhibitor um eine gewisse Ribonucleinsäure-Fraktion.

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Abbreviation PEI polyethylene imine The followingenzymes are mentioned in the text: Alcohol dehydrogenase Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (1.1.1.12), Malate dehydrogenase (1.1.1.37), Glucose-6-phosphate dehydrogenase (1.1.1.49), Glutamate dehydrogenase (NAD) (1.4.1.2), Glutamate dehydrogenase (NADP) (1.4.1.4), Aspartate -ketoglutarate aminotransferase (2.6.1.1), 6-Phosphofructokinase (2.7.1.11), Neutral trehalase (3.2.1.28), Pyruvate decarboxylase (4.1.1.1), Phosphoenolpyruvate carboxykinase (4.1.1.49).This paper is dedicated to Prof. Dr. Karl Decker on the occasion of his 60th birthday