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分别采用超声波辅助碱溶液、盐溶液和水3种溶剂提取青叶苎麻叶蛋白质,并分析其浓度、氮溶解指数、起泡性、起泡稳定性、乳化性和乳化稳定性。结果表明,超声波辅助盐溶液提取的蛋白质浓度(10.73 mg/mL)和氮溶解指数(61.95%)最高,且该方法提取的蛋白质的起泡性(26.34%)及泡沫稳定性(24.49%)显著优于其他两种溶剂方法;超声波辅助水提取的蛋白质乳化性(11.17 m2/g)最佳,而超声波辅助碱溶液提取的蛋白质的乳化稳定性最佳(231.92)。 相似文献
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为实现食品中单增李斯特菌污染的快速检测,本研究构建了一种基于CRISPR-Cas系统和Broccoli适配体的RNA均相检测技术。利用Cas 13与cr RNA锚定序列结合形成识别元件cr RNA-Cas13复合物,靶标RNA存在时可激活Cas 13的非特异性RNase活性,并利用点亮型RNA适配体Broccoli作为信号探针,监测cr RNA此-Cas13的活化状态。荧光值的变化与单增李斯特菌浓度存在线性关系,利用来检测单增李斯特菌。本研究所构建的检测可在30min内完成对于单增李斯特菌的的识别与检测,检出限为148CFU/m L,对细菌具有良好的检测特异性,可区分大肠杆菌、鼠伤寒沙门氏菌和蜡样芽孢杆菌。在牛奶模型中单增李斯特菌的加标回收率为95.15%~97.99%。该方法具有较好的灵敏度、特异性,可直接靶向检测致病菌RNA,无需逆转录、PCR扩增和核酸标记,简化了实验流程,对于实现食品中单增李斯特菌的现场检测及生物安全控制具有重要意义。 相似文献
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研究3,3′-二吲哚甲烷(3,3′-Diindolemethane,DIM)对常见食源性致病菌肠炎沙门氏菌(Salmonella enteritidis)生物被膜的抑制作用及其机制。通过结晶紫染色法结合显微镜图像评估DIM对S.enteritidis生物被膜的抑制效果,并进一步研究DIM对生物被膜形成过程、细菌运动性、胞外多糖(extracellular polysaccharide,EPS)和胞外DNA(extracellular DNA,eDNA)的影响。结果显示,DIM对S.enteritidis的最小生物被膜抑制浓度(minimum biofilm inhibitory concentration,MBIC)为31.2μmol/L;在15.6~31.2μmol/L范围内随着浓度增加,生物被膜结构逐渐崩塌,在MBIC下,生物被膜厚度和生物量比对照组分别降低约68%和91%(P<0.05);在生物被膜成熟阶段加入DIM的抑制率仅10%,显著低于在粘附和聚集阶段加入(P<0.05),说明DIM主要抑制S.enteritidis细菌粘附及聚集过程。在15.6~31.2μmol/L范围内,S.enteritidis游动直径和群集范围随着浓度增加而逐渐减小。此外,DIM在MBIC下使eDNA和EPS产生分别显著降低约67%和70%(P<0.05)。结果表明,DIM对S.enteritidis生物被膜形成有明显的抑制作用,且可能是通过阻碍细菌运动、抑制eDNA释放和EPS的产生防止细菌粘附和聚集,使生物被膜不能形成完整三维结构。 相似文献