苯丙氨酸添加下酪蛋白类蛋白反应修饰物的抗氧化性质

采用木瓜蛋白酶水解酪蛋白制备水解度为9．6％、DPPH·清除率为38．7％的水解物,添加苯丙氨酸于水解物并利用响应面法优化木瓜蛋白酶催化的类蛋白反应条件。在反应时间固定为5h下得到适宜的条件为：温度30℃、底物浓度50％（w／v）、酶添加量3kU／g蛋白质、氨基酸添加量0．74mol／mol水解物游离氨基。此条件下分别制备出5个修饰产物．以不添加苯丙氨酸的修饰产物或水解物和苯丙氨酸混合物为对照,评价它们的抗氧化活性。结果表明．与酪蛋白水解物或混合物或不添加苯丙氨酸的修饰产物相比,添加苯丙氨酸的修饰产物的DPPH·清除能力、还原能力和．OH清除能力显著提高;但是抗氧化性质与所采用的氨基酸添加量、反应时间之间的关系不显著。     

酪蛋白水解物的中性蛋白酶修饰及其ACE抑制活性

采用碱性蛋白酶水解酪蛋白,制备水解度为13.5%、IC50为45.23μg/mL的酪蛋白水解物,然后利用中性蛋白酶对水解物进行类蛋白反应修饰,并研究酶添加量、底物浓度、反应温度和时间对修饰反应的影响。结果表明,修饰反应体系中水解反应占优势,表现为游离氨基含量增加;酶添加量、底物浓度、反应时间对修饰反应的影响显著,而反应温度的影响不大;在低酶添加量、高底物浓度和短反应时间下,修饰反应体系的游离氨基的增加幅度减少,水解反应相对降低。制备6个不同反应程度的修饰产物,ACE抑制活性分析结果显示,修饰产物的IC50降至15.56~19.98μg/mL,表明中性蛋白酶催化的类蛋白反应修饰可以提高酪蛋白水解物的ACE抑制活性。     

丙醇-水介质中酪蛋白水解物的酶修饰与ACE抑制活性变化

利用碱性蛋白酶水解酪蛋白,制备出水解度为12.6％、ACE抑制活性为48.2％的酪蛋白水解物.利用碱性蛋白酶、在丙醇-水介质中进行类蛋白反应修饰酪蛋白水解物,研究反应温度、酶添加量、底物质量浓度、丙醇浓度对修饰反应的影响.响应面法试验设计,得到最优条件为反应温度47℃、酶添加量8.3 kU/g,底物质量浓度56.8 g/100 mL,丙醇体积分数58.5％.利用此条件制备出的反应程度不同的5个修饰产物,ACE抑制活性分析结果显示,抑制活性最高可以达到63.8％.在相应条件下加入酪氨酸或苯丙氨酸,对比试验结果显示,添加苯丙氨酸或酪氨酸会导致修饰产物抑制活性增加或降低.     

鹰嘴豆蛋白水解物类蛋白反应修饰与抗氧化活性研究

以碱性蛋白酶水解鹰嘴豆蛋白,制备水解度为20.03%的蛋白水解物,以该蛋白水解物为底物进行类蛋白反应修饰,制备抗氧化活性肽。以游离氨基减少量为试验指标,在分析反应温度、加酶量、底物质量分数对类蛋白反应影响的基础上,采用中心组合设计建立酶添加量、底物质量分数和p H值与游离氨基减少量的回归模型,优化类蛋白反应条件。试验结果表明,所建回归模型具有统计学意义,可以预测类蛋白反应规律。p H值对游离氨基减少量影响最大,其次是加酶量,底物质量分数影响较小。类蛋白反应的优化条件是:酶添加量417.4 U/g,底物质量分数49.8%和p H 3.48。抗氧化活性分析表明,类蛋白反应修饰产物的还原力和·OH清除率显著提高。     

酪蛋白水解物的酶法修饰与ACE抑制活性变化

利用枯草杆菌碱性蛋白酶水解酪蛋白制备酪蛋白水解物,其水解度为11.2%,IC50为47.1μg/mL。再应用相同的酶对酪蛋白水解物进行类蛋白反应修饰,考察底物浓度、温度和酶添加量对类蛋白反应的影响,并制备5个不同的修饰产物测定其ACE抑制活性和IC50值。结果表明,修饰产物的ACE抑制活性随修饰程度(游离氨基减少量)的增加而提高,并且都高于未经修饰的酪蛋白水解物。当游离氨基减少量为154.65μmol/g(蛋白)时,修饰产物的IC50值可降至0.6μg/mL。毛细管电泳分析结果显示类蛋白修饰后水解物的多肽组成情况发生明显变化。研究结果证明酪蛋白水解物的ACE抑制活性可以通过类蛋白反应的修饰作用而提高。     

酪蛋白水锯物的酶法修饰与ACE抑制活性变化

利用枯草杆菌碱性蛋白酶水解酪蛋白制备酪蛋白水解物,其水解度为11.2%,IC50为47.1μg/mL.再应用相同的酶对酪蛋白水解物进行类蛋白反应修饰,考察底物浓度、温度和酶添加量对类蛋白反应的影响,并制备5个不同的修饰产物测定其ACE抑制活性和IC50值.结果 表明,修饰产物的ACE抑制活性随修饰程度(游离氨基减少量)的增加而提高,并且都高于未经修饰的酪蛋白水解物.当游离氨基减少量为154.65 μmol/g(蛋白)时,修饰产物的IC50值可降至0.6 μg/mL.毛细管电泳分析结果显示类蛋白修饰后水解物的多肽组成情况发生明显变化.研究结果证明酪蛋白水解物的ACE抑制活性可以通过类蛋白反应的修饰作用而提高.     

大豆蛋白的酶水解及类蛋白反应对其抗氧化活性的影响

采用Alcalase 2.4L FG 蛋白酶水解大豆蛋白,筛选并制备出ABTS+·清除率最高的水解物,其水解度为14.0%,对ABTS+·清除率为43.6%。以此水解物为底物,以修饰产物的游离氨基减少量为指标,应用响应面分析得到类蛋白反应的优化条件为：酶添加量1037U/g pro、底物质量浓度30g/100mL、温度20℃。在此条件下反应6h,水解物的修饰反应程度和抗氧化活性均为最大。制备反应程度不等的3 个修饰产物,进一步抗氧化活性分析表明：大豆蛋白水解物及其修饰产物的抗氧化活性好于大豆蛋白;修饰产物与水解物的DPPH 自由基清除能力、还原力、超氧阴离子自由基(O2 － ·)清除率差别不显著,但是对羟自由基(·OH)清除率差别显著。     

酪蛋白水解物的类蛋白反应修饰及其产物ACE抑制活性特征

采用碱性蛋白酶水解酪蛋白,制备水解度为10.9%、IC50值为52.6μg/mL的酪蛋白水解物,并利用响应面法优化碱性蛋白酶催化的类蛋白反应修饰条件。修饰反应时间固定为6h时,适宜的条件为酶添加量3.1kU/g pro、底物质量浓度50g/100mL、反应温度25℃。制备9个修饰程度不同的修饰产物,结果显示：修饰产物ACE抑制活性均提高,并且活性最高的修饰产物的IC50降低至14.9μg/mL。该修饰产物离心分级后,上清液部分和沉淀部分的ACE抑制活性分别低于和高于修饰产物,表明沉淀部分是提高ACE抑制活性的主要原因;Tricine-SDS-PAGE电泳分析表明,修饰产物及沉淀部分有较大分子质量的肽分子生成;该修饰产物和上清液部分、沉淀部分的进一步酶水解处理则显示,酶水解会导致它们的ACE抑制活性降低,但是仍然高于最初的酪蛋白水解物。     

乙醇-水相中酪蛋白水解物修饰及对2个性质的影响

利用Alcalase水解酪蛋白,制备水解度为11.6％、IC5值为42.8 mg/L的酪蛋白水解物.在乙醇-水体系中采用Alcalase催化类蛋白反应修饰酪蛋白水解物,固定反应时间6h,优化得到酶添加量、乙醇体积分数、底物质量浓度、反应温度分别为:8.36 kU/g,56.8％,568 g/L,37.5℃.制备不同反应程度的修饰产物,评估其ACE抑制活性及Zn2+螯合能力变化,发现修饰产物的ACE抑制活性得到改善,抑制最高达到62.5％(IC50达到27.7 mg/L),但是与反应程度有关;Zn2+螯合能力则由4.22 mg/g降低至1.97～3.86 mg/g.修饰产物的Zn2+螯合能力与类蛋白反应程度无关,与ACE抑制活性也不存在相关性.     

酪蛋白水解物的Plastein反应修饰及ACE抑制活性变化

采用中性蛋白酶水解酪蛋白,一定条件下制备水解度为13.0%、IC50质量浓度为40.4 mg/L的酪蛋白水解物。利用中性蛋白酶对所制备出的水解物进行plastein反应修饰,以反应体系的游离氨基量的变化为评价指标,通过单一因素试验研究酶添加量、底物质量分数、反应时间和反应温度对修饰反应的影响。结果表明,适宜的反应条件为中性蛋白酶添加量3 kU/g蛋白质、底物质量分数60%、反应时间6 h、反应温度20℃。制备5个不同反应程度的修饰产物,ACE抑制活性分析结果显示,修饰产物的IC50降至14.7~31.1 mg/L,表明中性蛋白酶催化的plastein反应修饰提高酪蛋白水解物的ACE抑制活性,且ACE抑制活性的提高程度与plastein反应程度有关。     

Evaluation Of Antioxidant Properties In Vitro of Plastein-Reaction-Stressed Soybean Protein Hydrolysate

Alcalase was used in the present study to carry out an enzymatic hydrolysis of soybean protein isolate and a plastein reaction of the prepared hydrolysate in vitro, aiming to investigate the influence of the plastein reaction on the antioxidant properties of the modified hydrolysate. Soybean protein hydrolysate was prepared in a degree of hydrolysis of 14.0%, exhibited a scavenging activity of 43.6% on ABTS radical in vitro, and thus was used as the substrate of the plastein reaction to prepare the plastein-reaction-stressed hydrolysate. Response surface methodology was applied to select suitable reaction conditions as follows: enzyme addition level 1037 U/g peptides, substrate concentration 29.7% (w/v), reaction temperature 20.3°C. The stressed hydrolysate showed the highest scavenging activity on ABTS radical (about 47.9%) or maximal reaction extent when reaction time was 6 h. Three stressed hydrolysates with different reaction extents were prepared and evaluated for other antioxidant activities. Compared to the original hydrolysate, the stressed hydrolysate with lower reaction extent exhibited a similar (P > 0.05) scavenging activity on DPPH (or superoxide) radical and reducing power, but a significant higher activity (P < 0.05) on hydroxyl radical. The stressed hydrolysate with the highest reaction extent behaved as these investigated antioxidant properties were significantly higher (P < 0.05) than the original hydrolysate except for scavenging activity on DPPH radical. The results of the present study highlight that the alcalase-catalyzed plastein reaction appears to be capable of improving antioxidant properties of soybean protein hydrolysate.     

Coupled Neutrase–Catalyzed Plastein Reaction Mediated the ACE-Inhibitory Activity In Vitro of Casein Hydrolysates Prepared by Alcalase

Casein hydrolysates with a degree of hydrolysis of 13.5% were prepared by hydrolyzing casein with an alkaline protease Alcalase, and showed ACE-inhibition in vitro with an IC₅₀ value of 45.2 μg/mL. The hydrolysates were modified by plastein reaction catalyzed by a neutral protease Neutrase to reveal the impact of the coupled Neutrase-catalyzed plastein reaction on the ACE-inhibition of the casein hydrolysates. The effects of addition level of Neutrase, substrate concentration, reaction temperature, and time on the plastein reaction of the casein hydrolysates were studied with the varying amount of free amino groups of the modified hydrolysates as index. The results illustrated that the amount of free amino groups of the modified hydrolysates increased in all occasions, and the addition level of Neutrase, substrate concentration, and reaction time had a clear impact on the plastein reaction. Six modified hydrolysates were prepared at a substrate concentration of 40% (by weight), Neutrase addition level of 3 kU/g peptides, reaction temperature of 35°C, and different reaction time. The assay results highlighted that the coupled Neutrase-catalyzed plastein reaction improved the ACE-inhibition of six modified hydrolysates with IC₅₀ values ranging from 15.6 to 20.0 μg/mL. Size exclusion chromatography analysis showed that some plasteins with a molecular weight of about 68 kDa existed in the modified hydrolysates. The results also demonstrated that it was the coupled Neutrase-catalyzed plastein reaction but not further hydrolysis of casein hydrolysates that enhanced the ACE-inhibition of the modified casein hydrolysates.     

Protein hydrolysate from salmon frame debittered by plastein reaction: amino acid composition,characteristics and antioxidant activities

Impacts of plastein reaction on bitterness, physicochemical and antioxidant properties of salmon frame hydrolysate with the aid of various proteases (alcalase and papain) at different concentrations and varying reaction temperatures were investigated. Plastein was produced from hydrolysate by papain at 40°C, which had 30% degree of hydrolysis (30DHP). Rearrangement of peptides in hydrolysate was performed by 1% papain at 40°C for 10 h, yielding plastein namely ‘30DHP-P1’. It showed the lowest bitterness (P < 0.05) than other plasteins and hydrolysates. Surface hydrophobicity was not related well with bitterness. Therefore, the size of peptides also determines the bitterness. 30DHP-P1 had augmented solubility; however, its antioxidant activities (DPPH and ABTS radical scavenging activities and ferric reducing antioxidant power) were slightly lower (P < 0.05) than those of hydrolysates. Bitterness of hydrolysate was markedly debittered via plastein reaction under optimal condition. Plastein generally had lighter colour and still possessed antioxidant activity.     

山羊乳酪蛋白酶解物制备及体外抗氧化活性研究

以自由基清除能力、金属离子螯合能力和抗脂质过氧化能力为指标,采用均匀试验研究山羊乳酪蛋白酶解物的制备及其体外抗氧化活性,并且比较自由基清除能力的方法。结果表明：山羊乳酪蛋白适宜的酶解工艺为在60g/kg的底物浓度下,中性蛋白酶和碱性蛋白酶的添加量分别为4000U/g和250U/g,45℃、pH7.5条件下酶解24h。山羊乳酪蛋白经酶解后其体外抗氧化活性显著增强。山羊乳酪蛋白酶解物 ·OH清除率的EC50值是其蛋白的3.59倍,ABTS＋ ·的清除能力是其蛋白的158.72倍,螯合Fe2＋的能力是其蛋白的5.44倍;在亚油酸体系中抗脂质过氧化能力强于TBHQ,与VE相当。清除 ·OH、DPPH自由基、O2－ ·和ABTS＋ ·的方法不能相互替代。     

耦合Plastein反应的大豆蛋白降压肽酶法制备技术

利用碱性蛋白酶酶解大豆分离蛋白,制备出水解度为16.6% 的大豆蛋白水解物,随后对水解物进行Plastein反应修饰。利用响应面分析优化修饰反应条件,得到适宜参数：底物质量分数45%、酶添加量275U/g 蛋白质、反应时间3～4h、温度30℃。制备修饰反应程度不同的9 种修饰产物并评价其体外ACE 抑制活性,发现修饰产物的IC50 值为0.64～1.30mg/mL,均小于大豆蛋白水解物IC50 值(1.45mg/mL)。排阻色谱分析结果确认,修饰产物中有更多的高分子质量肽段存在。结果显示,大豆蛋白的酶解以及耦合Plastein 反应修饰,是一种制备高ACE抑制活性大豆蛋白降压肽的新技术。     

亚麻籽粕抗氧化肽制备工艺的响应面法优化

以亚麻籽粕蛋白为原料,酶解制备抗氧化肽。以DPPH自由基清除率为实验指标,通过单因素实验,筛选最佳蛋白酶并考察底物浓度、酶添加量、温度、pH及时间等对酶解物抗氧化能力的影响。在单因素实验基础上,采用响应曲面法进行酶解工艺条件的优化。结果表明:采用胰蛋白酶作为最适酶,酶解的最佳工艺条件为:底物浓度2%,温度37 ℃,酶解时间3.00 h,加酶量为4000 U/g,pH8.5,在该条件下,1 mg/mL酶解产物的DPPH自由基清除率及超氧阴离子自由基清除率分别为(63.64%±0.023%)和(19.98%±0.098%),0.5 mg/mL酶解产物的ABTS自由请清除率为(88.11%±0.059%)。说明亚麻籽粕抗氧化肽具有良好的抗氧化活性。     

石斑鱼肉肽的酶法制备工艺及其抗氧化性

以冰鲜石斑鱼肉为原料,采用碱性蛋白酶酶解的方法制备蛋白肽。以水解度和1,1-二苯基-2-三硝基苯肼（1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH）自由基清除率为评价指标,在单因素试验的基础上,运用正交试验设计优化肽的制备工艺;利用DPPH自由基法、2,2’-联氮双（3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸）二铵盐（2,2’-azinobis（3-ethylbenzothi azoline-6-sulfonic acid）ammonium salt,ABTS）自由基法、羟自由基（·OH）法和铁氰化钾还原法评价酶解物的抗氧化性。结果表明：石斑鱼肉肽的最佳制备条件为：酶解温度55 ℃、酶解pH 9、酶用量5 000 U/g、底物质量浓度8 g/100 mL、酶解时间5 h;石斑鱼肉肽酶解物具有较强的抗氧化性,清除DPPH自由基能力、ABTS+·能力、·OH能力和总还原力均随酶解物质量浓度的增加而增强;酶解物清除DPPH自由基、ABTS+·、·OH的半抑制浓度（IC50）值分别为（1.18±0.26）、（0.89±0.05） mg/mL和（0.35±0.02） mg/mL。     

2种蛋白酶酶解曲拉干酪素条件优化及抗氧化性比较

以曲拉干酪素为原料、水解度为指标,在酶解时间、酶解温度、pH值、曲拉干酪素质量浓度、酶添加量单因素试验基础上,采用响应面试验对碱性蛋白酶和胰蛋白酶酶解工艺条件进行优化,并对2 种酶解液的1,1-二苯基-2-三硝基苯肼（1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH）自由基、超氧阴离子自由基、羟自由基清除率,Fe2＋、Cu2＋螯合能力和还原力等抗氧化性指标进行比较。结果表明,碱性蛋白酶和胰蛋白酶分别在酶解时间3.8、2.5 h,酶解温度49.8、47.8 ℃,曲拉干酪素质量浓度60、35 g/L,pH 8.5、7.5,酶添加量140、2 900 U/g时水解度最大,为24.25%和13.57%。碱性蛋白酶解液超氧阴离子自由基清除率、Fe2＋螯合能力显著低于胰蛋白酶解液（P＜0.01）;羟自由基清除能力高于胰蛋白酶解液（P＞0.05）;2 种蛋白酶酶解液在酶解液质量浓度1～5 mg/mL时,Cu2＋螯合能力、DPPH自由基清除率和还原力随质量浓度均呈上升趋势,Cu2＋螯合能力低于Fe2＋螯合能力（P＞0.05）,DPPH自由基清除率和还原力二者差异显著（P＜0.01）。2 种蛋白酶对酶解物抗氧化性指标影响不同,碱性蛋白酶酶解物抗氧化性相对较优。