泡桐花多糖的体内外抗氧化活性

以泡桐花为原料水提醇沉法制备多糖,测定泡桐花多糖的体外、体内抗氧化活性。体外抗氧化测定结果显示,泡桐花多糖对超氧阴离子、羟基自由基清除以及抑制H₂O₂溶血有较好的效果,呈剂量依赖性;质量浓度0.5 mg/mL时,对超氧阴离子和羟基自由基清除率分别达到54.36%,74.62%,超过半数效应50%;质量浓度2 mg/mL时,抗H₂O₂氧化溶血率超过阳性对照组Vc（1 mg/mL）。体内抗氧化测定结果显示,泡桐花多糖低、中、高（日剂量5、10、20 mg/mL,0.2 mL）小鼠灌胃28 d对体质量无影响;血清和心脏、肝脏、肾脏、回肠脏器超氧化物歧化酶（superoxide dismutase,SOD）、还原型谷胱甘肽（glutathione,GSH）、丙二醛（malondialdehyde,MDA）含量和总抗氧化能力（total antioxidant capacity, T-AOC）检测表明,与空白组相比,不同剂量的泡桐花多糖能够增加或显著增加SOD、GSH含量和T-AOC水平（P<0.05）,同时降低MDA含量,并存在一定的量效关系。研究表明泡桐花多糖具有良好的抗氧化活性,可作为天然抗氧化剂应用于食药工业。     

响应面法优化红缘拟层孔菌胞外多糖发酵培养基

为提高红缘拟层孔菌(Fomitopsis pinicola)胞外多糖(EPS)产量,采用响应面法对其发酵培养基进行优化。在单因素实验基础上,利用中心组合设计原理,以蔗糖、酵母粉、MgSO4·7H2O浓度为实验因素,以多糖产量为响应值,采用3因素5水平响应面分析方法建立数学模型。结果显示,红缘拟层孔菌产EPS的最佳培养基为:蔗糖186g/L、酵母粉7g/L,MgSO4·7H2O 27g/L,KH2PO42g/L。在此条件下,EPS产量预测值为4.02g/L,验证值为(3.92±0.18)g/L。采用响应面法对红缘拟层孔菌EPS发酵培养基进行优化,方法可行。     

珊瑚菌子实体和菌丝体营养成分与抗氧化活性的比较

采用国标及常规分析方法对珊瑚菌子实体和菌丝体中营养成分和活性物质多糖、多酚含量及其抗氧化活性进行分析,结果表明:珊瑚菌子实体与菌丝体碳水化合物含量分别为38.74±1.27%和63.55±3.17%;脂肪含量分别为2.52±0.14%和3.21±0.19%;蛋白含量分别为11.02±1.21%和22.30±1.18%;灰分含量分别为5.77±0.14%和5.98±0.11%。子实体矿质元素含量普遍高于其菌丝体,Mg元素除外;必须氨基酸,菌丝体含量(7.08±0.15)g/100 g高于其子实体(2.55±0.24)g/100 g。子实体多糖含量(23.22±1.60)mg/g低于其菌丝体(35.51±1.78)mg/g,多酚含量(6.85±0.41)mg/g高于其菌丝体(3.66±0.29)mg/g。比较珊瑚菌多糖、多酚体外抗氧化活性强弱依次为子实体多酚菌丝体多酚菌丝体多糖子实体多糖。研究表明对于珊瑚菌菌丝体多糖,有望代替子实体应用于食药产品,而菌丝体多酚仍有待进一步开发利用。     

超高压食品加工技术研究进展

超高压食品加工技术是指以液体作为压力传递介质(通常以水为加压介质),在静高压100-1000MPa和一定温度下处理适当时间,使食品中的酶、蛋白质、淀粉等生物分子失活、变性或糊化,以达到灭酶、杀菌和改善食品功能等目的(图1).     

培养基组成对布拉氏酵母生长的影响及其优化

对益生菌布拉氏酵母(Saccharomyces boulardii)的培养基组成及培养条件对其生物量的影响进行了研究。通过单因素试验探讨培养基中碳氮源种类,磷酸二氢钾和硫酸镁浓度、pH以及接种量对布拉氏酵母生物量的影响;利用正交试验确定摇瓶培养的最适条件。结果表明布拉氏酵母的发酵培养基组成为:葡萄糖45 g/L,酵母膏12 g/L,磷酸二氢钾0.8 g/L,硫酸镁0.5 g/L。培养条件为:培养基初始pH5.5,接种量9%,培养时间24 h。在此条件下得到的布拉氏酵母菌体干重为6.5 g/L。     

不同纯度茶多酚和茶黄素的抗氧化活性

采用1,1-二苯基-2-三硝基苯肼（1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH）自由基清除实验和氧化损伤酵母细胞实验模型,对不同纯度的茶多酚和茶黄素的抗氧化活性进行比较研究。结果表明,茶多酚和茶黄素均对DPPH自由基具有一定的清除能力。氧化损伤酵母细胞实验结果表明,茶多酚和茶黄素对酵母细胞氧化损伤具有一定的保护作用,且在一定浓度范围内其保护能力呈剂量依赖关系。98%茶多酚对DPPH自由基清除率最高;60%茶黄素和90%茶多酚对H2O2氧化损伤酵母细胞保护作用相当;60%茶黄素对紫外氧化损伤酵母细胞保护作用最强。茶多酚和茶黄素具有一定的体外和细胞抗氧化活性,且不同方法测得的抗氧化活性存在一定的差异。