鸡卵黄抗体(IgY)的制备工艺研究

对鸡卵黄抗体(简称IgY)的制备工艺进行研究。通过低温乙醇沉淀、DEAE葡萄糖凝胶A-50离子交换层析、Tris-HCl缓冲液洗脱及Sephadex G200凝胶过滤等逐步纯化免疫球蛋白。研究卵黄稀释倍数、pH值、乙醇添加量以及盐浓度对纯化效果的影响。分离纯化后所得的提取物经检测IgY纯度可达98%。用大肠杆菌(E.coli)对其活性进行测定,效果良好,此方法能很好保持免疫球蛋白的活性。     

低温乙醇除脂法纯化鸡卵黄中免疫球蛋白

采用低温乙醇除脂法提取鸡卵黄免疫球蛋白 (immunoglobulinyolk,IgY)。通过低温乙醇沉淀、透析和葡聚糖凝胶等不同方法逐步纯化免疫球蛋白。研究了卵黄稀释倍数、乙醇浓度、NaCl浓度以及离心转速对纯化效果的影响。分离纯化后所得的冷冻干燥制品 ,经SDS PAGE和抑菌试验检测可知 :可溶性蛋白质得率为每毫升蛋黄 1 2 6mg ,可溶性蛋白质含量占总蛋白质量的 97% ,且保持了免疫球蛋白的活性     

鸡卵黄免疫球蛋白(IgY)分离纯化的研究

对鸡卵黄免疫球蛋白(IgY)的分离纯化进行了研究.工艺流程为:卵黄→8倍水稀释并搅拌10 min→用HCl调Ph至5.2后在4 ℃静置2 h去沉淀→在上清夜中加入95 %冰乙醇(-20 ℃)使终浓度为60 %(v/v)→4 ℃搅拌20 min后离心(22000 r/min,4 ℃,25 min)→收集沉淀并加入0.028 mol/L NaCl溶液在4 ℃下过滤除去脂蛋白沉淀→收集的滤液用SDS-PAGE法进行纯化得纯度为98 %的1gY.用大肠杆菌(E.coli)对其活性进行测定,效果良好,此方法能保持免疫球蛋白的活性.     

四种鸡卵黄免疫球蛋白纯化方法的研究

本文比较了分离纯化鸡卵黄免疫球蛋白(IgY)的四种方法(即水稀释法,聚乙二醇法,葡聚糖硫酸盐法和黄原胶法)。包括IgY产量,纯度,活性,简便性及扩大生产规模的潜力。试验表明:水稀释法(DS)产量最高,然后依次为葡聚糖硫酸盐法(DS),黄原胶法(Xan),聚乙二醇法(PEG);同时发现水稀释法简便、快速、高效,适用于工业化生产。     

抗变链球菌鸡卵黄免疫球蛋白(IgY)的制备及活性检测

以远缘链球菌(S.sorbrinus 6715血清型g)免疫产卵母鸡,应用酶联免疫吸附测定法(ELISA)测定鸡卵黄中免疫球蛋白(Immunoglobulin of Yolk,IgY)的活性,研究鸡免疫应答并制备出高免抗-S.sorbrinus IgY.结果显示以109 cfu/只剂量免疫的母鸡,第一次免疫后的第七天卵黄中出现特异性IgY,加强免设后抗体效价上升更快,经ELISA法检测,卵黄中的抗体效价到1384.而冷冻干燥后的IgY,其效价要超过12000.     

水稀释法分离鸡卵黄免疫球蛋白的研究

本研究详细探讨了水稀释法分离鸡卵黄免疫球蛋白（Immunoglobulin of Yolk:IgY）的主要工艺条件，当蛋黄液的稀释倍数为6、pH5.2时，IgY的提取率和纯度分别是6.73mg IgY/ml蛋黄、14.66%。比较了水稀释法和聚乙二醇法分离IgY的效果。结果表明，水稀释法更适合于大规模分离食品级IgY。     

一种新型的食品添加剂——鸡卵黄免疫球蛋白

当用某种抗原免疫产蛋母鸡时，鸡可产生相应的多克隆抗体─—免疫球蛋白，并被运送和储存于鸡卵的卵黄中，此种免疫球蛋白称为IgY（ImmumoglobulinofYolk）。一只母鸡一经免疫应答后，即可从其不断生产的鸡卵的卵黄中获得大量的、均一的、高效价的IgY，而且lgY有许多独到的优点，具有许多潜在的应用价值，可代替由免疫小鼠、兔等哺乳动物制备的抗体。因而近年来，国外对IgY的研究应用十分活跃，特别是将IgY作为食品的免疫型强化剂的应用研究正在不断开展，前景非常广阔。一、IgY的特点：1．IgY类似于哺乳动物的igY.分子量为180lH＞，…     

鸡卵黄免疫球蛋白的糖基化及其构效关系研究进展

鸡卵黄免疫球蛋白（egg yolk immunoglobulin,IgY）是鸡卵黄中的一种免疫球蛋白。由于其具有原料易得、制备简单、不与类风湿因子以及哺乳动物的补体发生交叉反应等优点,IgY是一种颇具潜力的抗生素替代品,但由于IgY性质不稳定,易受温度、pH值、酶的影响,从而限制了其实际应用。糖链在维持IgY理化性质、抗原特性等功能中扮演着重要角色。因此,对IgY进行糖基化修饰,从而改善其理化性质和抗原特性,不仅能使鸡蛋资源得到充分利用,也为开发蛋黄保健食品、添加剂以及相应的医药产品提供科学依据。本文归纳几种常见的IgY的糖基化方法,并论述IgY糖基化与其结构、理化性质之间的关系。     

鸡卵黄免疫球蛋白的分离制备研究

实验研究了从高免鸡卵黄中分离纯化免疫球蛋白(IgY)的方法。确定最优条件为:卵黄十倍稀释,pH5.3,-18℃冻结6h,4℃解冻;添加3%硅藻土进行微滤;采用超滤浓缩五倍;再用45%饱和硫酸铵(pH5.3)盐析;沉淀重溶后经DEAE-Sepharose F.F.柱层析分离纯化。结果表明,用此方法可以从高免鸡蛋中得到电泳纯IgY,总活性回收率达到64.16%。     

不同鸡蛋中鸡卵黄免疫球蛋白的比较

采用PEG分步沉淀法分别从京红一号鸡蛋、市售鸡蛋、土鸡蛋中制备鸡卵黄免疫球蛋白(IgY).通过SDS-PAGE分析提取物,发现存在2条主要的蛋白带:分别为66.4kDa和29.0kDa,与文献报道的IgY重链(～ 60kDa)和轻链(～ 30kDa)的分子量相符.     

抗人大肠杆菌蛋黄抗体的分离纯化及理化性质研究

以人源大肠杆菌(ATCC23985)免疫产蛋母鸡所产免疫蛋为原料，通过蛋黄水提物制备、乙醇分级沉淀、离子交换色谱和凝胶排阻色谱对其中的免疫蛋黄抗体进行了分离纯化，并对其基本理化性质进行了分析。结果表明：蒸馏水-氯仿法是制备蛋黄水提物的最优方法，而35％的乙醇添加量能够很好地将水提物中的抗体沉淀出来。经DEAE-Sepharose柱和SephacrylS-200柱连续纯化的抗体在电泳检测时只有1个区带。研究获得的抗人大肠杆菌卵黄抗体的等电点为5.5，包含分子质量分别为65900u和24600u的2类亚基。该抗体的氨基酸组成与普通蛋黄抗体的氨基酸组成差异不大。     

绿色高效连续分离技术制备蛋黄中活性蛋白质和磷脂

为了实现蛋黄功能性成分的充分利用，采用绿色溶剂从新鲜蛋黄中高效连续分离具有生物活性的卵黄免疫球蛋白（immunoglobulin Y, IgY）、卵黄高磷蛋白（phosvitin, PV）和磷脂（phospholipids, PL）。首先采用水稀释法（稀释倍数为1:10）分离水溶性组分与脂蛋白，通过35%饱和(NH₄)₂SO₄和0.5% NaCl（w/v）对上清液进行盐析并用8% PEG 6000纯化IgY。脂质组分中的PV在pH5.0，90 ℃条件下的NaCl溶液（w/v）中进一步纯化。采用乙醇/乙酸乙酯比例为1:2（v/v）提取蛋黄中全部脂类，进一步采用乙酸乙酯在0 ℃下提纯蛋黄总脂中的PL。经脱盐、冷冻干燥后，IgY、PV和PL的纯度分别为97.38%、78.63%和85.94%。IgY和PV的得率分别为6.15、10.15 mg/mL。蛋黄总脂中PL的含量为35.18%。因其良好的多不饱和脂肪酸/饱和脂肪酸比率（0.70）和相对较低的n-6/n-3比率（5.37），该PL产品可应用于食品加工中。本方法简便、环保并且高效，可从蛋黄中依次分离出高纯度IgY、PV和PL，并为蛋黄的综合利用提供技术支持。     

Simple purification methods for an alphagalactose-specific antibody from chicken eggs

For many applications avian antibody from egg yolk (IgY) offers advantages over the well-known mammalian antibodies. Different experimental techniques for the purification of IgY from chickens immunized with an alphagalactose-containing antigen (alphaGal-trisaccharide) were compared. These included ammonium sulfate precipitation, filtration with diatomaceous earth, treatment with deoxycholate, and thiophilic and affinity chromatography. Samples were tested for overall purity, protein and lipid content, and specific activity. Evaluated on the basis of these results and the simplicity of the process, the favored purification method is ammonium sulfate precipitation of diluted egg yolk directly followed by affinity chromatography. The high lipid content of IgY preparations is greatly reduced by either thiophilic or affinity chromatography. Affinity purification of ammonium sulfate precipitated material resulted in anti-alphaGal-trisaccharide IgY preparations with approximately 1% of the original protein content but approximately 100-fold higher specific activity for the alphaGal-trisaccharide epitope.     

特异性抗肠出血性大肠杆菌O157:H7内毒素鸡卵黄抗体的制备

目的:比较研究LPS和O-SP的免疫原性,制备出特异性抗内毒素(LPS)鸡卵黄免疫球蛋白(eggyolkimmunoglobulin,IgY),用于对E.coliO157:H7的免疫预防及检测。方法:分别用灭活E.coliO157:H7菌体、不同浓度内毒素(LPS)及O-特异性多糖链(O-SP)与不完全弗氏佐剂充分乳化后作抗原免疫临产蛋母鸡,以水稀释法从卵黄中提取抗体,阴离子交换色谱法实现对抗体的纯化,间接ELISA及双向免疫扩散检测抗体产生效价与活性。结果与结论:所制内毒素(LPS)和O-SP均有较好的免疫原性,刺激鸡体后可产生高效价抗体,灭活菌体、600μg/mlLPS、1200μg/mlLPS、2000μg/mlLPS、O-SP抗体产生效价最高可分别达1:32000、1:28000、1:32000、1:12000、1:40000。结合离子交换色谱,用0.185mol/L的离子强度可实现一步洗脱纯化抗体,制备出高纯度、高活性、特异性强的鸡卵黄免疫球蛋白IgY,为大肠杆菌O157:H7的感染防治提供了可靠的保证,在此实验基础之上可进一步探讨应用特异性IgY对大肠杆菌O157:H7的检测。     

幽门螺杆菌尿素酶的提取与纯化

采用2种方法分离纯化了幽门螺杆菌尿素酶。第1种方法是以 DEAE-sepharose FF离子交换剂和Superdex 200凝胶为分离介质,用 NaCl盐浓度梯度洗脱法从幽门螺杆菌超声上清液中提取纯化尿素酶抗原,所得到的纯化尿素酶经SDS-PAGE电泳分析,表明它具有很高的纯度,只含有分子质量为64 000 u和31 000 u两种蛋白成分,分别对应于幽门螺杆菌尿素酶的A、B两种亚基。第2种方法是以 DEAE-sepharose FF离子交换剂为分离介质,采用先去掉部分杂蛋白的方法纯化尿素酶,其中的去杂步骤操作简单、快捷且处理样品量大,大大减轻了后面纯化步骤的难度,适合于尿素酶的大量制备。纯化的尿素酶作为抗原采用ELISA间接法检测抗HP蛋黄免疫球蛋白(IgY),实验表明,其仍具有良好的抗原性,是HP主要抗原物质。应用纯化尿素酶抗原或纯化尿素酶抗原与超声粉碎抗原的混合抗原刺激蛋鸡应该能够产生抗HP效价更高的蛋黄免疫球蛋白,可以将其应用于保健或各种与HP相关的胃病的抗菌免疫治疗。     

单增李斯特菌(Listeria monocytogens)鸡卵黄抗体的制备及其抑菌活性研究

以单增李斯特菌为抗原免疫产蛋母鸡,比较了不同方法对于鸡卵黄中单增李斯特菌抗体(IgY)的分离效果,研究确定了所得IgY的主要理化性质及其对于单增李斯特菌的体外抑菌效果。研究结果表明,采用硫酸铵盐析法可以取得较好的提取纯化效果,提取液中的单增李斯特菌抗体效价可以达到1∶10 000以上,且蛋白组分较为单一。IgY具有较好的理化稳定性,pH3～9范围内均可保持70%以上的免疫活性,经60℃、4 h处理后仍保持约67%的免疫活性。体外抑菌实验显示,液态培养8 h、固态培养24 h后,该抗体能够对于单增李斯特菌的生长产生显著的抑制率效应;这表明其有望作为新型天然抗菌剂用于生物体及动物性食品中单增李斯特菌的预防和控制。     

Immunoglobulins from Egg Yolk: Isolation and Purification

Simple water dilution was employed for the separation of water-soluble plasma proteins from egg yolk granules. An optimum recovery of immunoglobulin Y (IgY, 93–96%) in water-soluble fraction was obtained by sixfold water dilution at pH between 5.0–5.2 with incubation time of 6 hr at 4°C. Among the factors studied, pH was found to be the most important factor affecting IgY recovery. Active IgY of high purity with good recovery was obtained by a combination of several techniques including salt precipitation, alcohol precipitation, ultrafiltration, gel filtration and ion exchange chromatography. Salt precipitation, ultrafiltration, and get filtration is the recommended sequence. Over 100 mg of electrophoretically pure IgY was routinely obtained from one egg.